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20(S)-原人参二醇对小鼠前列腺癌RM-1细胞体外作用的实验研究

内容提要第1-7页
主要英文缩写词表第7-8页
第1章 前言第8-19页
   ·人参皂甙单体结构第8-10页
   ·二醇组人参皂甙的抗肿瘤作用机制第10-13页
     ·抑制增殖,诱导凋亡第10页
     ·调节免疫功能第10页
     ·抑制肿瘤组织的转移和侵袭第10-11页
     ·抗肿瘤新生血管形成第11-12页
     ·逆转肿瘤细胞的多药耐药性第12页
     ·协同增效其他抗癌药第12-13页
     ·其它作用第13页
   ·雄激素非依赖性前列腺癌与雄激素受体的关系第13-19页
     ·基因扩增或是AR 敏感性增加第14-15页
     ·其他激活剂而非雄激素的交叉激活第15-16页
     ·AR 突变或其辅助调节因子的异常第16-19页
第2章 实验材料第19-22页
   ·实验用细胞第19页
   ·主要仪器与设备第19-20页
   ·试剂和药品第20页
   ·主要试剂的配制第20-22页
第3章 实验方法第22-29页
   ·细胞培养第22页
   ·实验分组第22页
   ·RM-1 冻存细胞的复苏第22页
   ·细胞的传代培养第22-23页
   ·细胞冻存第23页
   ·MTT 实验检测PPD 对RM-1 细胞增殖的影响第23页
   ·相差显微镜观察PPD作用后RM-1 细胞形态变化第23-24页
   ·吖叮橙/溴化乙啶(AO/EB)染色观察细胞凋亡第24页
   ·Annexin V试剂盒检测PPD对RM-1细胞凋亡影响第24-25页
   ·脱氧核酸末端标记法(TUNEL)检测细胞凋亡第25页
   ·RT-PCR 观察RM-1细胞bcl-2、bax、caspase-3、AR 基因表达第25-27页
   ·免疫细胞化学染色检测caspase-3,bax蛋白表达第27-28页
   ·统计学处理第28-29页
第4章 实验结果第29-37页
   ·PPD 对RM-1细胞增殖的影响第29-30页
   ·PPD作用后RM-1细胞的形态变化第30-31页
   ·AO/EB 染色后细胞凋亡观察第31页
   ·流式细胞术散点图结果第31-33页
   ·TUNEL 技术检测RM-1细胞凋亡--激光共聚焦扫描显微镜观察第33-34页
   ·RT-PCR 实验结果第34-35页
   ·免疫细胞化学染色结果第35-37页
第5章 讨论第37-42页
   ·PPD在体外可抑制RM-1细胞增殖第37-38页
   ·PPD在体外抑制RM-1 细胞增殖可能与下调AR 表达有关第38-39页
   ·PPD在体外可诱导RM-1细胞凋亡第39-40页
   ·PPD在体外诱导RM-1细胞凋亡可能与下调bcl-2/bax表达比率,激活caspase-3有关第40-42页
结论第42-43页
参考文献第43-49页
致谢第49-50页
中文摘要第50-52页
Abstract第52-54页

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