| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩写词索引 | 第8-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-17页 |
| 第二章 黄酮类苯并咪唑衍生物的合成与表征 | 第17-37页 |
| 1 仪器与试剂 | 第17-18页 |
| 1.1 仪器 | 第17页 |
| 1.2 试剂 | 第17-18页 |
| 2 方法与结果 | 第18-34页 |
| 2.1 黄酮类苯并咪唑衍生物的合成 | 第18-20页 |
| 2.2 黄酮类苯并咪唑衍生物的结构表征 | 第20-34页 |
| 3 讨论 | 第34页 |
| 4 小结 | 第34-37页 |
| 第三章 黄酮类苯并咪唑衍生物的体外抗肿瘤活性研究 | 第37-41页 |
| 1 仪器与试剂 | 第37-38页 |
| 1.1 仪器 | 第37页 |
| 1.2 试剂 | 第37页 |
| 1.3 细胞系 | 第37-38页 |
| 2 实验方法 | 第38-39页 |
| 2.1 细胞培养 | 第38页 |
| 2.2 黄酮类苯并咪唑衍生物抗细胞增殖活性 | 第38-39页 |
| 3 实验结果 | 第39页 |
| 4 讨论 | 第39-40页 |
| 4.1 构效关系 | 第39-40页 |
| 4.2 最优活性化合物的筛选 | 第40页 |
| 5 小结 | 第40-41页 |
| 第四章 体外细胞凋亡和细胞周期实验 | 第41-45页 |
| 1 仪器与试剂 | 第41页 |
| 1.1 仪器 | 第41页 |
| 1.2 试剂 | 第41页 |
| 2 实验方法 | 第41-42页 |
| 2.1 化合物15对MFC细胞的细胞凋亡影响 | 第41-42页 |
| 2.2 化合物15对MGC-803细胞的细胞凋亡影响 | 第42页 |
| 2.3 化合物15对MFC细胞的细胞周期的影响 | 第42页 |
| 2.4 统计学分析 | 第42页 |
| 3 实验结果 | 第42-44页 |
| 3.1 化合物15对MFC细胞的细胞凋亡影响 | 第42-43页 |
| 3.2 化合物15对MGC-803细胞的细胞凋亡影响 | 第43页 |
| 3.3 化合物15对MFC细胞的细胞周期的影响 | 第43-44页 |
| 4 讨论 | 第44页 |
| 5 小结 | 第44-45页 |
| 第五章 体内抗肿瘤研究 | 第45-51页 |
| 1 仪器与试剂 | 第45页 |
| 1.1 仪器 | 第45页 |
| 1.2 试剂 | 第45页 |
| 2 实验方法 | 第45-46页 |
| 2.1 动物饲养 | 第45页 |
| 2.2 荷瘤小鼠模型的建立及实验过程 | 第45-46页 |
| 2.3 荷瘤裸鼠模型的建立及实验过程 | 第46页 |
| 2.4 统计学分析 | 第46页 |
| 3 实验结果 | 第46-49页 |
| 3.1 荷瘤小鼠体内的抗肿瘤活性 | 第46-48页 |
| 3.2 荷瘤裸鼠体内的抗肿瘤活性 | 第48-49页 |
| 4 讨论 | 第49-50页 |
| 5 小结 | 第50-51页 |
| 第六章 化合物15作用于靶蛋白的研究 | 第51-55页 |
| 1 仪器与试剂 | 第51-52页 |
| 1.1 仪器 | 第51页 |
| 1.2 试剂 | 第51页 |
| 1.3 软件 | 第51-52页 |
| 2 实验方法 | 第52-53页 |
| 2.1 动物的饲养以及裸鼠人胃癌移植瘤模型的建立 | 第52页 |
| 2.2 肿瘤切片H&E染色 | 第52页 |
| 2.3 肿瘤切片的靶蛋白检测 | 第52页 |
| 2.4 分子对接 | 第52-53页 |
| 3 实验结果 | 第53-54页 |
| 3.1 免疫组化 | 第53页 |
| 3.2 分子对接 | 第53-54页 |
| 4 讨论 | 第54页 |
| 5 小结 | 第54-55页 |
| 全文总结 | 第55-57页 |
| 参考文献 | 第57-63页 |
| 综述 | 第63-79页 |
| 参考文献 | 第71-79页 |
| 攻读学位期间主要研究成果 | 第79-81页 |
| 致谢 | 第81页 |