| 缩略语表 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-11页 |
| 英文摘要 | 第11-14页 |
| 前言 | 第15-16页 |
| 文献回顾 | 第16-33页 |
| 第一部分 建立稳定存活的异基因近交系大鼠原位肝脏移植模型 | 第33-49页 |
| 1 实验仪器和材料 | 第33-34页 |
| 1.1 实验动物 | 第33页 |
| 1.2 主要试剂和材料 | 第33-34页 |
| 1.3 主要手术器械均购于上海金钟医疗器械公司 | 第34页 |
| 1.4 主要设备 | 第34页 |
| 2 实验方法 | 第34-40页 |
| 2.1 大鼠肝移植手术方法—改良双袖套法 | 第34-37页 |
| 2.2 主要观察指标及其定义 | 第37页 |
| 2.3 肝脏标本处理流程及方法 | 第37-40页 |
| 3 结果 | 第40-47页 |
| 4 讨论 | 第47-49页 |
| 第二部分 供体来源im Dex和供体抗原特异性Treg提取分离鉴定 | 第49-66页 |
| 1 实验材料及仪器 | 第49-51页 |
| 1.1 实验动物 | 第49页 |
| 1.2 主要试剂和材料 | 第49-50页 |
| 1.3 主要器械 | 第50页 |
| 1.4 仪器设备 | 第50-51页 |
| 2 方法 | 第51-59页 |
| 2.1 供体骨髓来源im DC的分离和培养 | 第51页 |
| 2.2 m Dex和im Dex的分离和鉴定 | 第51-52页 |
| 2.3 不同剂量供体来源im Dex用于肝移植受体 | 第52-53页 |
| 2.4 不同供体来源im Dex用于肝移植受体 | 第53页 |
| 2.5 CD4+CD25+ Treg细胞的提取与鉴定 | 第53-57页 |
| 2.6 供体来源SDC的分离 | 第57页 |
| 2.7 Lewis来源CD4+CD25+ Treg供体抗原特异性的获得 | 第57-59页 |
| 2.8 统计方法 | 第59页 |
| 3 结果 | 第59-64页 |
| 3.1 im Dex和m Dex的透射电镜检测 | 第59-60页 |
| 3.2 im Dex和m Dex表型分子的流式分析 | 第60页 |
| 3.3 两步磁珠分选出的Treg光镜下形态 | 第60-61页 |
| 3.4 磁珠分选出CD4+CD25+ T和CD4+CD25-T细胞流式表型分析 | 第61-62页 |
| 3.5 抗原特异性Treg的流式表型分析 | 第62-63页 |
| 3.6 抗原特异性Treg抑制T细胞增殖 | 第63-64页 |
| 3.7 抗原特异性Treg抑制T细胞IFN-γ 分泌 | 第64页 |
| 4 讨论 | 第64-66页 |
| 第三部分 供体im Dex和抗原特异Treg单独或联合应用对肝脏移植免疫排斥的影响 | 第66-83页 |
| 1 实验材料及仪器 | 第66-67页 |
| 1.1 实验动物 | 第66页 |
| 1.2 主要试剂和材料 | 第66页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第66-67页 |
| 2 方法 | 第67-73页 |
| 2.1 受体给药方法 | 第67页 |
| 2.2 生存分析生存时间的确定 | 第67-68页 |
| 2.3 HE | 第68页 |
| 2.4 Treg荧光示踪方法 | 第68-69页 |
| 2.5 免疫荧光染色-冰冻切片法 | 第69-71页 |
| 2.6 Im Dex联合Treg的体外功能验证 | 第71页 |
| 2.7 脾脏和外周血淋巴细胞分离 | 第71-72页 |
| 2.8 Treg体外增殖测定法 | 第72页 |
| 2.9 Treg体内增殖指数测定 | 第72页 |
| 2.10 统计方法 | 第72-73页 |
| 3 结果 | 第73-80页 |
| 3.1 生存分析 | 第73-75页 |
| 3.2 联用供体来源im Dex和供体抗原特异性Treg能够降低移植物炎性排斥水平 · 703.3 im Dex联合Treg可以降低受体T细胞的免疫应答水平 | 第75-78页 |
| 3.4 联合im Dex对外源Treg于受体体内分布的影响 | 第78-79页 |
| 3.5 im Dex与Treg联合方案具有协同作用 | 第79-80页 |
| 4 讨论 | 第80-83页 |
| 小结 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-96页 |
| 个人简历和研究成果 | 第96-98页 |
| 致谢 | 第98-99页 |
