| 中文摘要 | 第3-5页 |
| 英文摘要 | 第5-6页 |
| 1 绪论 | 第9-23页 |
| 1.1 细菌生物膜研究进展 | 第9-11页 |
| 1.1.1 细菌生物膜的形成与发展 | 第9-10页 |
| 1.1.2 细菌生物膜的防治方法 | 第10-11页 |
| 1.2 银基等离子体光催化剂的研究现状 | 第11-15页 |
| 1.2.1 Ag@AgX等离子体光催化材料 | 第11-14页 |
| 1.2.2 Ag@AgX等离子体光催化剂对细菌的作用研究 | 第14-15页 |
| 1.3 红外光谱技术及其在微生物研究中的应用 | 第15-19页 |
| 1.3.1 红外光谱技术 | 第15-16页 |
| 1.3.2 红外光谱技术在微生物研究中的应用 | 第16-17页 |
| 1.3.3 本课题使用的化学计量学方法 | 第17-19页 |
| 1.4 石英晶体微天平（QCM）及其在微生物研究中的应用 | 第19-21页 |
| 1.4.1 QCM理论 | 第19-20页 |
| 1.4.2 QCM在微生物研究中的应用 | 第20-21页 |
| 1.5 本课题研究目的、研究内容及创新点 | 第21-23页 |
| 1.5.1 研究目的 | 第21页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第21-22页 |
| 1.5.3 创新点 | 第22-23页 |
| 2 Ag@AgCl对鼠伤寒沙门氏菌生物膜的抑制作用研究 | 第23-34页 |
| 2.1 引言 | 第23页 |
| 2.2 实验部分 | 第23-28页 |
| 2.2.1 材料、试剂及仪器 | 第23-25页 |
| 2.2.2 Ag@AgCl等离子体光催化剂的制备 | 第25页 |
| 2.2.3 Ag@AgCl对鼠伤寒沙门氏菌最低抑菌浓度的测定 | 第25-26页 |
| 2.2.4 鼠伤寒沙门氏菌体外BF模型的建立 | 第26-27页 |
| 2.2.5 Ag@AgCl对鼠伤寒沙门氏菌BF的抑制作用研究 | 第27-28页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第28-33页 |
| 2.3.1 Ag@AgCl等离子体光催化剂的表征 | 第28-30页 |
| 2.3.2 Ag@AgCl对鼠伤寒沙门氏菌的最低抑菌浓度 | 第30页 |
| 2.3.3 鼠伤寒沙门氏菌BF培养结果 | 第30-31页 |
| 2.3.4 Ag@AgCl对鼠伤寒沙门氏菌BF的抑制作用结果 | 第31-33页 |
| 2.4 小结 | 第33-34页 |
| 3 Ag@AgCl对鼠伤寒沙门氏菌抑杀作用的红外光谱研究 | 第34-44页 |
| 3.1 引言 | 第34页 |
| 3.2 实验部分 | 第34-35页 |
| 3.2.1 材料、试剂及仪器 | 第34页 |
| 3.2.2 抗菌测试 | 第34-35页 |
| 3.2.3 红外光谱分析 | 第35页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第35-42页 |
| 3.3.1 抗菌测试结果分析 | 第35-36页 |
| 3.3.2 细菌红外光谱表征 | 第36-38页 |
| 3.3.3 主成分（PCA）及其载荷图（LPA）分析 | 第38-42页 |
| 3.3.4 Ag@AgCl的抑菌机理 | 第42页 |
| 3.4 小结 | 第42-44页 |
| 4 Ag@AgCl对鼠伤寒沙门氏菌初始粘附性能的影响研究 | 第44-55页 |
| 4.1 引言 | 第44页 |
| 4.2 实验部分 | 第44-46页 |
| 4.2.1 材料、试剂及仪器 | 第44-45页 |
| 4.2.2 QCM传感器装置的构建 | 第45页 |
| 4.2.3 扫描电镜（FESEM）观察Ag@AgCl对细菌的作用 | 第45-46页 |
| 4.2.4 细菌粘附实验 | 第46页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第46-54页 |
| 4.3.1 QCM传感器的气液相稳定性实验 | 第46-48页 |
| 4.3.2 FESEM测试结果与分析 | 第48-49页 |
| 4.3.3 QCM测试结果与分析 | 第49-54页 |
| 4.4 小结 | 第54-55页 |
| 5 结论与展望 | 第55-58页 |
| 5.1 结论 | 第55-56页 |
| 5.2 展望 | 第56-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-69页 |
| 附录 | 第69页 |
