摘要 | 第3-4页 |
abstract | 第4-5页 |
缩略语表 | 第10-11页 |
1 引言 | 第11-19页 |
1.1 研究背景 | 第11页 |
1.2 ERF转录因子的研究进展 | 第11-13页 |
1.2.1 ERF转录因子的结构特征 | 第11-12页 |
1.2.2 ERF转录因子在植物发育过程中的作用 | 第12页 |
1.2.3 ERF转录因子在植物中的分布 | 第12页 |
1.2.4 目前存在的问题及解决策略 | 第12-13页 |
1.3 油菜素内酯研究进展 | 第13-17页 |
1.3.1 油菜素内酯生物合成 | 第13-15页 |
1.3.2 BRs在作物上的应用 | 第15页 |
1.3.3 油菜素内酯在植物发育过程中的调控作用 | 第15-17页 |
1.4 研究内容与目的意义 | 第17-19页 |
1.4.1 研究内容 | 第17-18页 |
1.4.2 目的意义 | 第18-19页 |
2 材料与方法 | 第19-28页 |
2.1 实验材料 | 第19页 |
2.1.1 植物材料 | 第19页 |
2.1.2 菌株 | 第19页 |
2.1.3 质粒 | 第19页 |
2.2 药品及仪器 | 第19-22页 |
2.2.1 试剂和酶 | 第19-20页 |
2.2.2 试剂盒 | 第20页 |
2.2.3 药品 | 第20页 |
2.2.4 培养基和其它试剂配制 | 第20-21页 |
2.2.5 实验仪器 | 第21-22页 |
2.3 实验方法 | 第22-28页 |
2.3.1 BvERF家族基因序列的搜索 | 第22页 |
2.3.2 BvERF家族成员系统进化分析 | 第22页 |
2.3.3 基因结构分析和保守性模体鉴定 | 第22页 |
2.3.4 BvERF家族基因在甜菜块根发育过程中的表达模式分析 | 第22-23页 |
2.3.5 RNA提取及cDNA制备 | 第23页 |
2.3.6 实时荧光定量PCR | 第23页 |
2.3.7 质粒提取和PCR产物纯化 | 第23页 |
2.3.8 植物表达载体构建 | 第23-26页 |
2.3.9 农杆菌感受态细胞制备和转化 | 第26-27页 |
2.3.10 浸花法转化拟南芥 | 第27页 |
2.3.11 拟南芥根部表型鉴定 | 第27页 |
2.3.12 内源油菜素内酯含量的测定 | 第27-28页 |
3 结果与分析 | 第28-52页 |
3.1 ERF家族基因的生物信息学分析与候选基因筛选 | 第28-36页 |
3.1.1 甜菜中ERF家族基因的鉴定与生物信息学分析 | 第28-31页 |
3.1.2 BvERF家族基因在甜菜块根膨大过程中的表达模式分析 | 第31-33页 |
3.1.3 BvERF基因在甜菜不同器官中的表达特异性 | 第33-35页 |
3.1.4 BvCPD基因表达模式分析 | 第35-36页 |
3.2 基因克隆与转基因拟南芥的获得 | 第36-43页 |
3.2.1 BvCPD、Bv_fefj和Bv_wnjc基因克隆与植物表达载体构建 | 第36-41页 |
3.2.2 35S::BvCPD、35S::Bv_fefj和35S::Bv_wnjc转基因株系的获得 | 第41-43页 |
3.3 转基因株系的表型分析 | 第43-49页 |
3.3.1 35S::BvCPD转基因株系的表型分析 | 第43-45页 |
3.3.2 35S::Bv_fefj转基因株系的表型分析 | 第45-47页 |
3.3.3 35S::Bv_wnjc转基因株系的表型分析 | 第47-49页 |
3.3.4 候选基因过表达对下游基因表达水平的影响 | 第49页 |
3.4 BvCPD、Bv_fefj和Bv_wnjc的EGFP融合表达载体构建 | 第49-52页 |
4 讨论 | 第52-57页 |
4.1 甜菜ERF家族的分组及基本特性 | 第52-53页 |
4.2 Bv_CPD、Bv_fefj和Bv_wnjc在根发育中的作用 | 第53-57页 |
4.2.1 Bv_CPD在根发育中的作用 | 第54-55页 |
4.2.2 Bv_fefj和Bv_wnjc在根发育中的作用 | 第55-57页 |
5 结论 | 第57-58页 |
6 研究展望 | 第58-59页 |
致谢 | 第59-60页 |
参考文献 | 第60-70页 |
附录 | 第70-73页 |
作者简介 | 第73页 |