| 摘要 | 第3-4页 |
| abstract | 第4页 |
| 缩略语表 | 第8-9页 |
| 1 引言 | 第9-15页 |
| 1.1 肿瘤的概述 | 第9-10页 |
| 1.2 肿瘤的化疗与联合治疗 | 第10页 |
| 1.3 肿瘤的干细胞及耐药理论 | 第10-12页 |
| 1.3.1 肿瘤干细胞理论 | 第11页 |
| 1.3.2 获得性耐药理论 | 第11-12页 |
| 1.3.3 化疗诱导细胞衰老促进其获得干性 | 第12页 |
| 1.4 3D培养 | 第12-14页 |
| 1.4.1 3D细胞培养 | 第12-13页 |
| 1.4.2 3D组织培养 | 第13-14页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第14-15页 |
| 2 实验材料与方法 | 第15-24页 |
| 2.1 实验材料 | 第15页 |
| 2.2 主要仪器及试剂 | 第15-16页 |
| 2.2.1 主要仪器 | 第15页 |
| 2.2.2 主要试剂及配制 | 第15-16页 |
| 2.3 实验方法 | 第16-24页 |
| 2.3.1 肿瘤组织的培养 | 第16页 |
| 2.3.2 原代肿瘤细胞单层培养 | 第16-17页 |
| 2.3.3 肿瘤组织的冻存 | 第17页 |
| 2.3.4 肿瘤组织加药治疗以及耐药细胞染色 | 第17页 |
| 2.3.5 ELISA检测乳腺癌组织IFN-r水平 | 第17-19页 |
| 2.3.6 肿瘤组织的处理及冰冻切片 | 第19页 |
| 2.3.7 免疫荧光染色 | 第19-20页 |
| 2.3.8 细胞培养 | 第20-21页 |
| 2.3.9 Transwell实验检测TE对GL261的侵袭的影响 | 第21页 |
| 2.3.10 GL261细胞的染色 | 第21页 |
| 2.3.11 小鼠大脑的振动切片 | 第21-22页 |
| 2.3.12 体外脑片的培养 | 第22页 |
| 2.3.13 建立C57BL/6 小鼠GL261脑内移植瘤模型 | 第22-23页 |
| 2.3.14 小鼠原位模型大脑的处理 | 第23页 |
| 2.3.15 统计方法 | 第23-24页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第24-36页 |
| 3.1 实验结果 | 第24-36页 |
| 3.1.1 肿瘤组织的培养 | 第24页 |
| 3.1.2 原代肿瘤细胞单层培养 | 第24-25页 |
| 3.1.3 肿瘤组织样本数统计 | 第25页 |
| 3.1.4 胰腺癌组织加药治疗以及耐药细胞染色 | 第25-26页 |
| 3.1.5 胰腺癌组织干性检测 | 第26-27页 |
| 3.1.6 乳腺癌组织加药治疗以及耐药细胞染色 | 第27-28页 |
| 3.1.7 乳腺癌组织IFN-r检测 | 第28-29页 |
| 3.1.8 乳腺癌组织干性检测 | 第29-30页 |
| 3.1.9 GL261培养及CM-Dil染色标记 | 第30-31页 |
| 3.1.10 Transwell观测细胞侵袭 | 第31-32页 |
| 3.1.11 体外脑片侵袭模型的构建 | 第32-33页 |
| 3.1.12 体外脑片培养观测细胞侵袭 | 第33-34页 |
| 3.1.13 小鼠联合用药治疗及生存曲线的绘制 | 第34-36页 |
| 4 实验讨论 | 第36-38页 |
| 5 结论 | 第38-39页 |
| 致谢 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-49页 |
| 作者简介 | 第49页 |
