| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第11-18页 |
| 1.1 选题背景 | 第11-12页 |
| 1.2 脱氮产物N_2O | 第12-14页 |
| 1.2.1 脱氮产物N_2O的产生 | 第12-13页 |
| 1.2.2 脱氮产物N_2O的危害 | 第13页 |
| 1.2.3 脱氮产物N_2O的控制 | 第13-14页 |
| 1.3 铁离子参与的生物脱氮反应研究 | 第14-16页 |
| 1.4 本实验的研究目的、意义与技术路线 | 第16-18页 |
| 1.4.1 研究目的与意义 | 第16页 |
| 1.4.2 技术路线图 | 第16-18页 |
| 第二章 菌株Alsobacter metallidurans SK200a-9的脱氮关键基因检测 | 第18-25页 |
| 2.1 实验材料与方法 | 第18-20页 |
| 2.1.1 菌株Alsobacter metallidurans SK200a-9来源 | 第18页 |
| 2.1.2 DNA的提取和PCR扩增 | 第18-19页 |
| 2.1.3 实验试剂和仪器 | 第19页 |
| 2.1.4 数据分析方法 | 第19-20页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第20-24页 |
| 2.2.1 菌株的16SrRNA系统发育分析 | 第20-21页 |
| 2.2.2 菌株的脱氮基因序列分析 | 第21页 |
| 2.2.3 nirK基因系统发育分析 | 第21-23页 |
| 2.2.4 讨论 | 第23-24页 |
| 2.3 本章小结 | 第24-25页 |
| 第三章 菌株Alsobacter metallidurans SK200a-9的Fe(Ⅱ)参与的脱氮活性研究 | 第25-35页 |
| 3.1 实验材料与方法 | 第25-29页 |
| 3.1.1 反硝化培养基的选取 | 第25-26页 |
| 3.1.2 实验设计 | 第26-27页 |
| 3.1.3 实验试剂及仪器 | 第27-28页 |
| 3.1.4 样品各指标测定方法 | 第28-29页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第29-34页 |
| 3.2.1 菌株的形态学观察与分析 | 第29页 |
| 3.2.2 反硝化培养基的选取 | 第29-30页 |
| 3.2.3 反硝化培养基碳氮比的确定 | 第30-31页 |
| 3.2.4 菌株SK200a-9脱氮体系与反应条件的确定 | 第31-32页 |
| 3.2.5 亚硝酸盐与Fe(Ⅱ)化学反应的确认 | 第32-33页 |
| 3.2.6 讨论 | 第33-34页 |
| 3.3 本章小结 | 第34-35页 |
| 第四章 菌株Alsobacter metallidurans SK200a-9脱氮性能的最适亚铁离子浓度条件研究 | 第35-40页 |
| 4.1 材料与方法 | 第35-36页 |
| 4.1.1 实验设计 | 第35-36页 |
| 4.1.2 实验试剂及仪器 | 第36页 |
| 4.1.3 样品各指标测定方法 | 第36页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第36-39页 |
| 4.2.1 葡萄糖中不同亚铁离子浓度对菌株脱氮能力的影响 | 第37-38页 |
| 4.2.2 乙酸钠中不同亚铁离子浓度对菌株脱氮能力的影响 | 第38页 |
| 4.2.3 琥珀酸中不同亚铁离子浓度对菌株脱氮能力的影响 | 第38页 |
| 4.2.4 讨论 | 第38-39页 |
| 4.3 本章小结 | 第39-40页 |
| 第五章 菌株Alsobacter metallidurans SK200a-9在三种碳源不同浓度下脱氮性能的研究 | 第40-45页 |
| 5.1 材料与方法 | 第40-41页 |
| 5.1.1 实验设计 | 第40-41页 |
| 5.1.2 实验试剂及仪器 | 第41页 |
| 5.1.3 样品各指标测定方法 | 第41页 |
| 5.2 结果与讨论 | 第41-44页 |
| 5.2.1 无碳源添加菌株SK200a-9脱氮活性研究 | 第42页 |
| 5.2.2 菌株SK200a-9利用不同浓度葡萄糖的脱氮活性 | 第42-43页 |
| 5.2.3 菌株SK200a-9利用不同浓度乙酸钠的脱氮活性 | 第43页 |
| 5.2.4 菌株SK200a-9利用不同浓度琥珀酸的脱氮活性 | 第43页 |
| 5.2.5 讨论 | 第43-44页 |
| 5.3 本章小结 | 第44-45页 |
| 结论与展望 | 第45-47页 |
| 参考文献 | 第47-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
