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熊果酸靶向脑转移黑色素瘤纳米药物的制备及其机制研究

缩词列表第9-10页
摘要第10-11页
Abstract第11页
第一章 绪论第12-29页
    1.1 纳米药物第12-18页
        1.1.1 癌症与纳米技术第12-14页
        1.1.2 纳米药物载体-纳米颗粒第14-18页
    1.2 PLGA纳米药物第18-26页
        1.2.1 PLGA特点第18-19页
        1.2.2 PLGA纳米颗粒的制备方法第19-22页
            1.2.2.1 乳化溶剂挥发法第19-20页
            1.2.2.2 乳化溶剂扩散法第20-21页
            1.2.2.3 盐析法第21页
            1.2.2.4 纳米沉淀法第21-22页
        1.2.3 靶向治疗癌症的策略第22-26页
            1.2.3.1 被动靶向第23-24页
            1.2.3.2 主动靶向第24-25页
            1.2.3.3 理化靶向第25-26页
    1.3 本论文的设计思想第26-29页
第二章 透明质酸-壳聚糖表面修饰的载熊果酸PLGA纳米药物对癌症的靶向治疗研究第29-53页
    2.1 引言第29-30页
    2.2 材料与方法第30-39页
        2.2.1 材料第30-31页
            2.2.1.1 实验材料第30页
            2.2.1.2 主要试剂第30页
            2.2.1.3 主要仪器第30-31页
        2.2.2 PLGA(UA)-CS-HA纳米药物的制备方法第31-33页
            2.2.2.1 PLGA(UA)纳米药物的制备第31页
            2.2.2.2 PLGA(UA)纳米药物进行壳聚糖表面修饰第31-32页
            2.2.2.3 绿色荧光标记的透明质酸的制备第32页
            2.2.2.4 PLGA(UA)-CS-HA以及绿色荧光标记的PLGA(UA)-CS-HA纳米药物的制备第32-33页
        2.2.3 纳米药物的表征第33-34页
            2.2.3.1 扫描电子显微镜观察第33页
            2.2.3.2 纳米药物的粒径分析第33页
            2.2.3.3 载药量与包封率分析第33-34页
        2.2.4 纳米药物的体外药物释放第34-35页
        2.2.5 细胞培养相关实验第35-37页
            2.2.5.1 纳米药物体外抑制肿瘤细胞生长的测定第35页
            2.2.5.2 细胞表面CD44受体表达测定第35页
            2.2.5.3 HA修饰的载熊果酸的PLGA纳米药物细胞吸附试验第35-36页
            2.2.5.4 CD44靶向性细胞吸附检测第36-37页
        2.2.6 抗小鼠颅内黑色素瘤实验第37-38页
        2.2.7 稳定表达绿色荧光蛋白的B16细胞株的建立第38页
        2.2.8 脑部肿瘤形态观察第38-39页
    2.3 结果与分析第39-50页
        2.3.1 纳米药物的合成及表征分析第39-40页
        2.3.2 体外药物释放第40-41页
        2.3.3 纳米药物体外抑制肿瘤细胞生长第41-42页
        2.3.4 HA表面修饰的载熊果酸PLGA纳米药物能够在B16细胞表面靶向聚集第42-44页
        2.3.5 CD44受体的表达分析以及PLGA(UA)-CS-HA纳米药物与CD44受体的靶向结合第44-47页
        2.3.6 小鼠生存时间第47-49页
        2.3.7 体内抗肿瘤效果检测第49-50页
    2.4 讨论第50-53页
第三章 纳米药物释放的熊果酸诱导黑色素瘤细胞凋亡的分子机制第53-73页
    3.1 引言第53页
    3.2 材料与方法第53-58页
        3.2.1 材料第53-54页
            3.2.1.1 实验材料第53-54页
            3.2.1.2 主要试剂第54页
            3.2.1.3 主要仪器第54页
        3.2.2 方法第54-58页
            3.2.2.1 体外肿瘤生长抑制实验第54-55页
            3.2.2.2 细胞核形态观察第55页
            3.2.2.3 细胞周期分析第55页
            3.2.2.4 Annexin V/propidium iodide(PI)细胞凋亡流式分析第55-56页
            3.2.2.5 活性氧、一氧化氮、超氧化物阴离子检测第56页
            3.2.2.6 BSO对细胞内活性氧浓度的影响第56页
            3.2.2.7 总谷胱甘肽检测第56-57页
            3.2.2.8 GSH和GSSG检测第57页
            3.2.2.9 线粒体膜电位变化第57-58页
            3.2.2.10 免疫荧光试验第58页
    3.3 结果与分析第58-70页
        3.3.1 体外肿瘤细胞生长抑制实验第58-59页
        3.3.2 细胞周期分析第59页
        3.3.3 细胞核形态观察第59-60页
        3.3.4 Annexin V/propidium iodide(PI)细胞凋亡流式分析第60-61页
        3.3.5 活性氧、一氧化氮、超氧化物阴离子检测第61-64页
        3.3.6 熊果酸对GSH和GSSG水平的影响第64-66页
        3.3.7 NAC能够减弱UA诱导的细胞凋亡第66-68页
        3.3.8 线粒体膜电位的变化第68-69页
        3.3.9 熊果酸诱导的B16细胞凋亡引起凋亡诱导因子(AIF)从线粒体转位至细胞核第69-70页
    3.4 讨论第70-73页
第四章 总结第73-75页
参考文献第75-83页
致谢第83页

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