| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 第一章 绪论 | 第8-27页 |
| 1.1 原子力显微镜（AFM）简介 | 第8-13页 |
| 1.1.1 AFM成像原理和硬件架构 | 第9-11页 |
| 1.1.2 AFM常规操作模式 | 第11-13页 |
| 1.2 AFM在生物样品中的研究应用 | 第13-17页 |
| 1.2.1 AFM对生物样品表面的形态观测 | 第13-14页 |
| 1.2.2 AFM对生物样品的纳米操纵 | 第14-15页 |
| 1.2.3 单分子力谱 | 第15-17页 |
| 1.3 产气荚膜梭菌溶素O（PFO） | 第17-20页 |
| 1.3.1 成孔毒素 | 第17-18页 |
| 1.3.2 胆固醇依赖溶细胞素（CDCs） | 第18-19页 |
| 1.3.3 产气荚膜梭菌溶素O（PFO） | 第19-20页 |
| 1.4 PFO成孔过程研究进展 | 第20-24页 |
| 1.4.1 PFO成孔机理 | 第20-22页 |
| 1.4.2 PFO孔复合物的形态观测 | 第22-24页 |
| 1.5 本文主要内容和意义 | 第24-27页 |
| 第二章 AFM研究膜蛋白样品制备与成像技术的建立 | 第27-40页 |
| 2.1. 概述 | 第27-29页 |
| 2.2 AFM对云母表面进行高分辨成像 | 第29-31页 |
| 2.3 AFM对霍乱毒素B五聚体（CTX-B）进行高分辨成像 | 第31-34页 |
| 2.3.1 霍乱毒素简介 | 第31-32页 |
| 2.3.2 样品制备 | 第32页 |
| 2.3.3 AFM高分辨成像 | 第32-34页 |
| 2.4 磷脂双分子层膜制备 | 第34-40页 |
| 2.4.1 磷脂双分子层简介 | 第34-35页 |
| 2.4.2 磷脂双分子层膜制备方法 | 第35-40页 |
| 第三章 对PFO样品的AFM高分辨成像研究 | 第40-54页 |
| 3.1 样品制备 | 第40-47页 |
| 3.1.1 囊泡熔融法 | 第40-42页 |
| 3.1.2 特制聚四氟乙烯小孔制样法 | 第42-46页 |
| 3.1.3 改进的特制聚四氟乙烯小孔制样法 | 第46-47页 |
| 3.2 PFO孔通道AFM高分辨成像 | 第47-50页 |
| 3.3 实验结果分析 | 第50-54页 |
| 3.3.1 PFO成孔过程的简单模型 | 第50-52页 |
| 3.3.2 PFO孔通道所含单体数的统计分布 | 第52-54页 |
| 第四章 实时观察PFO的成孔过程 | 第54-64页 |
| 4.1 常规AFM观察PFO的成孔过程 | 第54-56页 |
| 4.1.1 实验材料与实验方法 | 第54页 |
| 4.1.2 实验结果分析 | 第54-56页 |
| 4.2 ICON温控成像 | 第56-59页 |
| 4.2.1 ICON温控系统简介 | 第56-58页 |
| 4.2.2 ICON温控成像技术 | 第58-59页 |
| 4.3 高速AFM观察PFO的成孔过程 | 第59-64页 |
| 4.3.1 高速AFM简介 | 第59-61页 |
| 4.3.2 高速AFM样品制备 | 第61-63页 |
| 4.3.3 实验结果分析 | 第63-64页 |
| 第五章 结论与展望 | 第64-67页 |
| 参考文献 | 第67-72页 |
| 致谢 | 第72-75页 |