| 摘要 | 第14-16页 |
| Abstract | 第16-18页 |
| 第一章 前言 | 第19-32页 |
| 1.1 原花色素的研究 | 第19-26页 |
| 1.1.1 原花色素的概念和分类 | 第19-22页 |
| 1.1.2 植物样品的储存及原花色素的提取、分离与纯化 | 第22页 |
| 1.1.3 原花色素的定量分析 | 第22-24页 |
| 1.1.4 原花色素的结构分析 | 第24-25页 |
| 1.1.4.1 核磁共振碳谱分析植物原花色素结构 | 第24页 |
| 1.1.4.2 基于色谱分离技术的结构分析 | 第24-25页 |
| 1.1.4.3 质谱技术分析植物原花色素结构 | 第25页 |
| 1.1.5 原花色素的抗氧化活性 | 第25-26页 |
| 1.2 酪氨酸酶的研究 | 第26-31页 |
| 1.2.1 酪氨酸酶的结构 | 第26-29页 |
| 1.2.2 酪氨酸酶抑制剂的研究 | 第29-30页 |
| 1.2.3 酪氨酸酶抑制剂的应用 | 第30-31页 |
| 1.3 本课题的研究内容与研究意义 | 第31-32页 |
| 第二章 响应曲面法优化多酚提取条件 | 第32-46页 |
| 2.1 实验部分 | 第32-35页 |
| 2.1.1 仪器 | 第32页 |
| 2.1.2 材料与试剂 | 第32页 |
| 2.1.3 实验方法 | 第32-35页 |
| 2.1.3.1 总酚含量的测定 | 第32页 |
| 2.1.3.2 总黄酮含量的测定 | 第32-33页 |
| 2.1.3.3 FRAP法测定抗氧化能力 | 第33页 |
| 2.1.3.4 DPPH法测定自由基清除能力 | 第33页 |
| 2.1.3.5 单因素条件实验设计 | 第33-34页 |
| 2.1.3.6 响应曲面法 | 第34页 |
| 2.1.3.7 统计学分析 | 第34-35页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第35-45页 |
| 2.2.1 单因素条件优化 | 第35-39页 |
| 2.2.1.1 乙醇浓度的优化 | 第35页 |
| 2.2.1.2 提取时间的优化 | 第35-36页 |
| 2.2.1.3 提取温度的优化 | 第36-38页 |
| 2.2.1.4 固液比的优化 | 第38页 |
| 2.2.1.5 提取次数的优化 | 第38-39页 |
| 2.2.1.6 抗氧化值指标与多酚含量的相关性 | 第39页 |
| 2.2.2 响应曲面法优化 | 第39-45页 |
| 2.3 小结 | 第45-46页 |
| 第三章 原花色素结构解析 | 第46-54页 |
| 3.1 实验部分 | 第46-47页 |
| 3.1.1 仪器 | 第46页 |
| 3.1.2 材料与试剂 | 第46页 |
| 3.1.3 原花色素的提取与纯化 | 第46-47页 |
| 3.1.3.1 原花色素的提取与纯化 | 第46页 |
| 3.1.3.2 原花色素的卞硫醇降解 | 第46-47页 |
| 3.1.3.3 HPLC-DAD-MS分析原花色素降解产物及副产物 | 第47页 |
| 3.1.3.4 原花色素的液体~(13)C NMR分析 | 第47页 |
| 3.1.3.5 MALDI-TOF-MS分析 | 第47页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第47-53页 |
| 3.2.1 原花色素的液体~(13)C NMR分析 | 第47-48页 |
| 3.2.2 降解产物HPLC-ESI-MS分析 | 第48-50页 |
| 3.2.3 原花色素的MALDI-TOF-MS分析 | 第50-53页 |
| 3.3 小结 | 第53-54页 |
| 第四章 原花色素的抗氧化活性分析 | 第54-63页 |
| 4.1 实验部分 | 第54-55页 |
| 4.1.1 仪器 | 第54页 |
| 4.1.2 材料与试剂 | 第54页 |
| 4.1.3 实验方法 | 第54-55页 |
| 4.1.3.1 原花色素的提取与纯化 | 第54页 |
| 4.1.3.2 总酚含量的测定 | 第54页 |
| 4.1.3.3 总黄酮含量的测定 | 第54页 |
| 4.1.3.4 FRAP法测定抗氧化能力 | 第54-55页 |
| 4.1.3.5 DPPH法测定自由基清除率 | 第55页 |
| 4.1.3.6 ABTS法测定自由基清除率 | 第55页 |
| 4.1.3.7 统计学分析 | 第55页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第55-62页 |
| 4.2.1 植物样品的总酚含量 | 第55-56页 |
| 4.2.2 原花色素总酚含量的比较 | 第56页 |
| 4.2.3 原花色素总黄酮含量的比较 | 第56-57页 |
| 4.2.4 FRAP抗氧化能力的比较 | 第57-58页 |
| 4.2.5 DPPH自由基清除率的比较 | 第58-59页 |
| 4.2.6 ABTS自由基清除率的比较 | 第59-62页 |
| 4.2.7 原花色素结构与抗氧化活性的关系 | 第62页 |
| 4.3 小结 | 第62-63页 |
| 第五章 原花色素对酪氨酸酶活性的影响 | 第63-82页 |
| 5.1 实验部分 | 第63-66页 |
| 5.1.1 仪器 | 第63页 |
| 5.1.2 材料与试剂 | 第63页 |
| 5.1.3 实验方法 | 第63-66页 |
| 5.1.3.1 原花色素对酪氨酸酶活性的影响及酶抑制动力学分析 | 第63-64页 |
| 5.1.3.1.1 原花色素对蘑菇酪氨酸酶单酚酶活力的影响 | 第63页 |
| 5.1.3.1.2 原花色素对蘑菇酪氨酸酶双酚酶活力的影响 | 第63-64页 |
| 5.1.3.1.3 原花色素对蘑菇酪氨酸酶二酚酶抑制类型的测定 | 第64页 |
| 5.1.3.1.4 原花色素对酶抑制作用动力学常数测定 | 第64页 |
| 5.1.3.2 荧光淬灭法研究原花色素对酪氨酸酶的作用机理 | 第64页 |
| 5.1.3.3 采用紫外可见光谱分析原花色素对酪氨酸酶作用的光谱学研究 | 第64-65页 |
| 5.1.3.3.1 效应物对蘑菇酪氨酸酶催化L-多巴氧化反应光谱的影响 | 第64-65页 |
| 5.1.3.3.2 效应物对高碘酸钠氧化L-多巴反应光谱的影响 | 第65页 |
| 5.1.3.3.3 原花色素与铜离子的相互作用 | 第65页 |
| 5.1.3.4 配体小分子与酪氨酸酶模型的分子对接研究 | 第65-66页 |
| 5.1.3.4.1 配体小分子与酪氨酸酶三维结构模型的构建 | 第65-66页 |
| 5.1.3.4.2 分子对接 | 第66页 |
| 5.2 结果与讨论 | 第66-81页 |
| 5.2.1 原花色素对蘑菇酪氨酸酶活性的影响及酶抑制机理 | 第66-71页 |
| 5.2.1.1 原花色素对蘑菇酪氨酸酶单酚酶活力的影响 | 第66-68页 |
| 5.2.1.2 原花色素对蘑菇酪氨酸酶双酚酶活力的影响 | 第68-70页 |
| 5.2.1.3 原花色素对蘑菇酪氨酸酶的抑制机理 | 第70-71页 |
| 5.2.1.4 原花色素对蘑菇酪氨酸酶的抑制类型 | 第71页 |
| 5.2.2 荧光淬灭法研究原花色素对蘑菇酪氨酸酶的作用机理 | 第71-73页 |
| 5.2.3 紫外可见光谱分析原花色素对酪氨酸酶的作用机理 | 第73-78页 |
| 5.2.3.1 原花色素对蘑菇酪氨酸酶催化L-酪氨酸氧化反应光谱的影响 | 第73-76页 |
| 5.2.3.2 原花色素对蘑菇酪氨酸酶二酚酶催化L-多巴氧化反应光谱的影响 | 第76-77页 |
| 5.2.3.3 原花色素对高碘酸钠氧化L-多巴反应光谱的影响 | 第77-78页 |
| 5.2.3.4 原花色素与铜离子的相互作用 | 第78页 |
| 5.2.4 配体与酪氨酸酶模型的对接研究 | 第78-81页 |
| 5.3 小结 | 第81-82页 |
| 第六章 结论与展望 | 第82-84页 |
| 6.1 结论 | 第82-83页 |
| 6.2 展望 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-89页 |
| 硕士期间发表论文及所获荣誉 | 第89-91页 |
| 致谢 | 第91页 |
