| 摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第12-32页 |
| 1.1 循环肿瘤细胞及循环肿瘤细胞的检测 | 第12-20页 |
| 1.1.1 循环肿瘤细胞的特点 | 第12-13页 |
| 1.1.2 循环肿瘤细胞检测的意义及问题 | 第13-14页 |
| 1.1.3 循环肿瘤细胞检测的常用方法及特点 | 第14-20页 |
| 1.2 自驱动微马达简介 | 第20-28页 |
| 1.2.1 自驱动微马达的制备方法及特点 | 第20-23页 |
| 1.2.2 自驱动微马达在生物医学上的应用优势与特点 | 第23-26页 |
| 1.2.3 自驱动微马达在生物传感上的应用特点及问题 | 第26-28页 |
| 1.3 静电纺纤维在生物传感上的应用 | 第28-31页 |
| 1.3.1 静电纺纤维的制备方法及特点 | 第28-29页 |
| 1.3.2 静电纺纤维在生物传感上的应用 | 第29-30页 |
| 1.3.3 静电纺纤维结合聚集诱导发光在生物传感上的应用 | 第30-31页 |
| 1.4 本论文的研究意义与内容 | 第31-32页 |
| 1.4.1 本论文的研究意义 | 第31页 |
| 1.4.2 本论文的研究内容 | 第31-32页 |
| 第二章 TPE衍生物和FITC衍生物的制备及表征 | 第32-39页 |
| 2.1 实验部分 | 第32-35页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第32页 |
| 2.1.2 TPE-T的合成制备 | 第32-33页 |
| 2.1.3 FITC-G的合成制备 | 第33-34页 |
| 2.1.4 TPE-T和FITC-G与Aptamer的AIE及ACQ性质 | 第34-35页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第35-37页 |
| 2.2.1 TPE-T及中间产物的核磁表征 | 第35-36页 |
| 2.2.2 FITC-G及中间产物的核磁表征 | 第36-37页 |
| 2.2.3 TPE-T和FITC-G与Aptamer的AIE和ACQ表征 | 第37页 |
| 2.3 本章小结 | 第37-39页 |
| 第三章 自驱动双面短纤维的制备及表征 | 第39-48页 |
| 3.1 实验部分 | 第39-42页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第39页 |
| 3.1.2 不同长度电纺聚合物双面短纤维的制备 | 第39-40页 |
| 3.1.3 双面短纤维的表面修饰 | 第40-41页 |
| 3.1.4 双面短纤维的表征 | 第41页 |
| 3.1.5 过氧化氢酶的固定化表征 | 第41-42页 |
| 3.1.6 双面短纤维的运动表征 | 第42页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第42-47页 |
| 3.2.1 双面短纤维的结构与形貌 | 第42-43页 |
| 3.2.2 固定化酶的最适条件 | 第43-44页 |
| 3.2.3 不同长度双面短纤维的运动轨迹及速度 | 第44-47页 |
| 3.3 本章小结 | 第47-48页 |
| 第四章 双面短纤维对细胞的定量检测 | 第48-56页 |
| 4.1 实验部分 | 第48-49页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第48页 |
| 4.1.2 双面短纤维对HepG2细胞的荧光响应 | 第48-49页 |
| 4.1.3 双面短纤维对不同细胞的荧光响应 | 第49页 |
| 4.1.4 双面短纤维在血清介质中对HepG2细胞的荧光响应 | 第49页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第49-54页 |
| 4.2.1 Aptamer接枝量、纤维长度、H2O2浓度对HepG2细胞检测的影响 | 第49-51页 |
| 4.2.2 双面短纤维用于HepG2细胞的定量检测 | 第51-53页 |
| 4.2.3 双面短纤维对于HepG2细胞的特异性 | 第53页 |
| 4.2.4 双面短纤维在血清中对HepG2细胞检测及抗干扰能力 | 第53-54页 |
| 4.3 本章小结 | 第54-56页 |
| 全文总结 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-66页 |
| 简写附录 | 第66-67页 |
| 攻读硕士期间发表论文 | 第67-68页 |
