| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-27页 |
| 1 青光眼 | 第13-14页 |
| 1.1 青光眼和高眼压 | 第13页 |
| 1.2 青光眼和高眼压的药物治疗 | 第13-14页 |
| 1.3 散瞳剂的应用 | 第14页 |
| 2 拟肾上腺素药新福林和抗肾上腺素药贝特舒 | 第14-19页 |
| 2.1 拟肾上腺素药新福林 | 第15-18页 |
| 2.1.1 新福林眼部应用的作用机理 | 第15-16页 |
| 2.1.2 新福林在眼科中的应用 | 第16-17页 |
| 2.1.3 新福林眼局部应用的不良反应 | 第17-18页 |
| 2.2 抗肾上腺素药贝特舒 | 第18-19页 |
| 2.2.1 贝特舒眼部应用的作用机理 | 第18-19页 |
| 2.2.2 贝特舒在眼科中的应用 | 第19页 |
| 2.2.3 贝特舒眼局部应用的不良反应 | 第19页 |
| 3 细胞凋亡概述 | 第19-26页 |
| 3.1 细胞凋亡的途径 | 第19-23页 |
| 3.1.1 死亡受体途径 | 第20-21页 |
| 3.1.2 线粒体途径 | 第21-22页 |
| 3.1.3 内质网途径 | 第22页 |
| 3.1.4 胱冬肽酶非依赖性途径 | 第22-23页 |
| 3.2 细胞凋亡的过程及特征 | 第23页 |
| 3.2.1 细胞凋亡的过程及形态学特征 | 第23页 |
| 3.2.2 细胞凋亡的生化特征 | 第23页 |
| 3.3 细胞凋亡的检测 | 第23-26页 |
| 3.3.1 形态学观察 | 第24页 |
| 3.3.2 质膜通透性检测 | 第24页 |
| 3.3.3 DNA降解分析 | 第24-25页 |
| 3.3.4 DNA原位缺口末端标记法(TUNEL) | 第25页 |
| 3.3.5 细胞凋亡相关蛋白检测 | 第25-26页 |
| 4 本文的目的及意义 | 第26-27页 |
| 第二章 新福林对人角膜基质细胞的凋亡诱导作用研究 | 第27-51页 |
| 1 实验材料与用品 | 第27-30页 |
| 1.1 实验材料 | 第27页 |
| 1.2 实验药品 | 第27-28页 |
| 1.3 实验仪器 | 第28-29页 |
| 1.4 几种主要溶液的配方 | 第29-30页 |
| 2 实验方法 | 第30-36页 |
| 2.1 实验前的准备 | 第30-31页 |
| 2.1.1 人角膜基质细胞的体外培养 | 第30页 |
| 2.1.2 人角膜基质细胞的收获、传代和接板 | 第30-31页 |
| 2.1.3 倍比稀释法得不同浓度新福林 | 第31页 |
| 2.2 不同浓度新福林处理HCS细胞的实验方法 | 第31-36页 |
| 2.2.1 用不同浓度新福林处理HCS细胞的形态学观察 | 第31-32页 |
| 2.2.2 用不同浓度新福林处理HCS细胞的MTT检测 | 第32页 |
| 2.2.3 新福林处理HCS细胞的细胞周期检测 | 第32-33页 |
| 2.2.4 用不同浓度新福林处理HCS细胞的AO/EB荧光双染色 | 第33页 |
| 2.2.5 新福林处理HCS细胞的磷脂酰丝氨酸的质膜定位检测 | 第33-34页 |
| 2.2.6 新福林处理HCS细胞的DNA琼脂糖凝胶电泳 | 第34页 |
| 2.2.7 新福林处理HCS细胞的透射电镜检测 | 第34页 |
| 2.2.8 新福林处理HCS细胞的Bcl-2家族蛋白检测 | 第34-35页 |
| 2.2.9 新福林处理HCS细胞的线粒体膜电位检测 | 第35页 |
| 2.2.10 新福林处理HCS细胞的Caspase活性检测 | 第35-36页 |
| 2.3 统计学分析 | 第36页 |
| 3 实验结果 | 第36-46页 |
| 3.1 不同浓度新福林处理HCS细胞的形态学变化 | 第36-38页 |
| 3.2 不同浓度新福林处理HCS细胞的MTT检测 | 第38-39页 |
| 3.3 新福林处理HCS细胞的细胞周期检测 | 第39-40页 |
| 3.4 新福林处理HCS细胞的磷脂酰丝氨酸的质膜定位检测 | 第40-41页 |
| 3.5 新福林处理HCS细胞的DNA断片化 | 第41-42页 |
| 3.6 不同浓度新福林处理HCS细胞的超微结构变化 | 第42-43页 |
| 3.7 新福林处理HCS细胞的线粒体膜电位检测 | 第43-44页 |
| 3.8 新福林处理HCS细胞的Bcl-2家族蛋白检测 | 第44-45页 |
| 3.9 新福林处理HCS细胞的线粒体膜电位检测 | 第45-46页 |
| 3.10 新福林处理HCS细胞的Caspase活性检测 | 第46页 |
| 4 讨论 | 第46-49页 |
| 5 结论 | 第49-51页 |
| 第三章 贝特舒对人角膜基质细胞的凋亡诱导作用研究 | 第51-70页 |
| 1 实验材料与用品 | 第51-52页 |
| 1.1 实验材料 | 第51页 |
| 1.2 实验药品 | 第51页 |
| 1.3 实验仪器 | 第51页 |
| 1.4 几种主要溶液的配方 | 第51-52页 |
| 2 实验方法 | 第52-55页 |
| 2.1 实验前的准备 | 第52页 |
| 2.1.1 人角膜基质细胞的体外培养 | 第52页 |
| 2.1.2 人角膜基质细胞的收获、传代和接板 | 第52页 |
| 2.1.3 倍比稀释法得不同浓度贝特舒 | 第52页 |
| 2.2 不同浓度贝特舒处理HCS细胞的实验方法 | 第52-55页 |
| 2.2.1 用不同浓度贝特舒处理HCS细胞的形态学观察 | 第52页 |
| 2.2.2 用不同浓度贝特舒处理HCS细胞的MTT检测 | 第52-53页 |
| 2.2.3 贝特舒处理HCS细胞的细胞周期检测 | 第53页 |
| 2.2.4 用不同浓度贝特舒处理HCS细胞的AO/EB荧光双染色 | 第53页 |
| 2.2.5 贝特舒处理HCS细胞的磷脂酰丝氨酸的质膜定位检测 | 第53-54页 |
| 2.2.6 贝特舒处理HCS细胞的DNA琼脂糖凝胶电泳 | 第54页 |
| 2.2.7 贝特舒处理HCS细胞的透射电镜检测 | 第54页 |
| 2.2.8 贝特舒处理HCS细胞的Bcl-2家族蛋白检测 | 第54页 |
| 2.2.9 贝特舒处理HCS细胞的线粒体膜电位检测 | 第54-55页 |
| 2.2.10 贝特舒处理HCS细胞的Caspase活性检测 | 第55页 |
| 2.3 统计学分析 | 第55页 |
| 3 实验结果 | 第55-66页 |
| 3.1 不同浓度贝特舒处理HCS细胞的形态学变化 | 第55-58页 |
| 3.2 不同浓度贝特舒处理HCS细胞的MTT检测 | 第58-59页 |
| 3.3 贝特舒处理HCS细胞的细胞周期检测 | 第59-60页 |
| 3.4 不同浓度贝特舒处理HCS细胞的质膜通透性变化 | 第60-61页 |
| 3.5 贝特舒处理HCS细胞的磷脂酰丝氨酸的质膜定位检测 | 第61-62页 |
| 3.6 贝特舒处理HCS细胞的DNA断片化 | 第62-63页 |
| 3.7 不同浓度贝特舒处理HCS细胞的超微结构变化 | 第63-64页 |
| 3.8 贝特舒处理HCS细胞的Bcl-2家族蛋白检测 | 第64-65页 |
| 3.9 贝特舒处理HCS细胞的线粒体膜电位检测 | 第65-66页 |
| 3.10 贝特舒处理HCS细胞的Caspase活性检测 | 第66页 |
| 4 讨论 | 第66-68页 |
| 5 结论 | 第68-70页 |
| 全文总结 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
| 个人简历 | 第80-81页 |
| 在学期间发表的学术论文及专利 | 第81页 |
