| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第11-22页 |
| 1.1 课题背景 | 第11-12页 |
| 1.2 课题研究现状 | 第12-20页 |
| 1.2.1 海藻多糖提取工艺的研究 | 第12-14页 |
| 1.2.2 实验设计在海藻多糖提取条件优化中的应用 | 第14-16页 |
| 1.2.3 海藻多糖分离纯化与精制 | 第16-18页 |
| 1.2.4 海藻多糖补体结合活性的研究 | 第18-20页 |
| 1.3 课题来源及研究目的和内容 | 第20页 |
| 1.3.1 课题来源 | 第20页 |
| 1.3.2 研究目的和内容 | 第20页 |
| 1.4 本研究的技术路线 | 第20-22页 |
| 第2章 海藻多糖的提取工艺优化 | 第22-33页 |
| 2.1 材料 | 第22页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第22页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第22页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第22页 |
| 2.2 方法 | 第22-25页 |
| 2.2.1 优化方案设计 | 第23页 |
| 2.2.2 均匀设计法提取海带渣多糖 | 第23页 |
| 2.2.3 不同对照方法提取海带渣多糖 | 第23-24页 |
| 2.2.4 海带渣多糖浓度的测定 | 第24-25页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第25-31页 |
| 2.3.1 总糖含量测定标准曲线的制作 | 第25页 |
| 2.3.2 海带渣多糖的均匀设计提取结果 | 第25-26页 |
| 2.3.3 海带渣多糖产量的回归分析与优化模型 | 第26-29页 |
| 2.3.4 优化验证实验 | 第29-30页 |
| 2.3.5 不同提取方法的海藻多糖提取率比较研究 | 第30页 |
| 2.3.6 讨论 | 第30-31页 |
| 2.4 本章小结 | 第31-33页 |
| 第3章 海藻多糖的补体结合活性研究 | 第33-43页 |
| 3.1 材料 | 第33-34页 |
| 3.1.1 实验仪器 | 第33页 |
| 3.1.2 细胞及主要试剂 | 第33-34页 |
| 3.1.3 缓冲液及试剂的配置 | 第34页 |
| 3.2 方法 | 第34-36页 |
| 3.2.1 补体结合实验 | 第34-36页 |
| 3.2.2 以补体结合活性为指标的回归分析与优化模型 | 第36页 |
| 3.2.3 兼顾产量和补体结合活性的回归分析与优化模型 | 第36页 |
| 3.2.4 优化验证试验 | 第36页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第36-42页 |
| 3.3.1 不同粗多糖样品的补体结合活性测定结果 | 第36-38页 |
| 3.3.2 以补体结合活性为指标的提取条件优化模型 | 第38-39页 |
| 3.3.3 兼顾补体结合活性与提取率的多糖提取条件优化模型 | 第39页 |
| 3.3.4 不同优化模型的多糖补体结合活性验证结果 | 第39-41页 |
| 3.3.5 讨论 | 第41-42页 |
| 3.4 本章小结 | 第42-43页 |
| 第4章 海藻多糖的分离纯化研究 | 第43-61页 |
| 4.1 材料 | 第43-44页 |
| 4.1.1 实验仪器 | 第43页 |
| 4.1.2 色谱填料及色谱柱 | 第43-44页 |
| 4.1.3 主要化学试剂 | 第44页 |
| 4.2 方法 | 第44-47页 |
| 4.2.1 色谱柱和色谱填料预处理 | 第44页 |
| 4.2.2 大孔树脂纯化粗多糖 | 第44-46页 |
| 4.2.3 离子交换层析纯化多糖 | 第46页 |
| 4.2.4 透析法除盐和小分子杂质 | 第46页 |
| 4.2.5 凝胶色谱柱对各级分多糖的纯化 | 第46-47页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第47-59页 |
| 4.3.1 蛋白质及葡萄糖标准曲线的制作 | 第47-48页 |
| 4.3.2 大孔树脂筛选结果 | 第48-52页 |
| 4.3.3 大孔树脂D3520 对粗多糖的大量富集纯化 | 第52-53页 |
| 4.3.4 离子交换树脂DEAE Sepharose CL-6B对多糖的纯化分级 | 第53-56页 |
| 4.3.5 透析除盐和小分子杂质 | 第56页 |
| 4.3.6 凝胶色谱柱对各级分多糖的纯化结果 | 第56-59页 |
| 4.3.7 讨论 | 第59页 |
| 4.4 本章小结 | 第59-61页 |
| 结论 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-69页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文及其它成果 | 第69-71页 |
| 致谢 | 第71页 |
