| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4页 |
| 前言 | 第7-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第8-18页 |
| 1.1 小球藻概述 | 第8-11页 |
| 1.1.1 小球藻的分类及生活史 | 第8页 |
| 1.1.2 小球藻的经济价值 | 第8-9页 |
| 1.1.3 小球藻的培养方式 | 第9-11页 |
| 1.2 代谢物组学 | 第11-17页 |
| 1.2.1 代谢物组学概况 | 第11-12页 |
| 1.2.2 代谢物组学研究方法 | 第12-15页 |
| 1.2.3 代谢物组学研究应用 | 第15-17页 |
| 1.3 本课题的研究目标、意义和创新性 | 第17-18页 |
| 第二章 不同接种密度对小球藻生长的影响 | 第18-30页 |
| 2.1 材料与方法 | 第18-24页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第18-19页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第19页 |
| 2.1.3 传统培养方式 | 第19-22页 |
| 2.1.4 小球藻生长状况测定方法的确立 | 第22-23页 |
| 2.1.5 不同接种密度小球藻生长曲线的测定 | 第23-24页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第24-30页 |
| 2.2.1 显微镜镜检小球藻 | 第24页 |
| 2.2.2 OD540 与细胞计数的关系 | 第24-25页 |
| 2.2.3 OD560 与细胞计数线性关系 | 第25-26页 |
| 2.2.4 OD750 与细胞计数线性关系 | 第26-27页 |
| 2.2.5 不同接种密度的小球藻生长动力学 | 第27-28页 |
| 2.2.6 小结 | 第28-30页 |
| 第三章 不同接种密度培养小球藻中脂肪酸的变化 | 第30-43页 |
| 3.1 材料与方法 | 第30-33页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第30页 |
| 3.1.2 试剂配制 | 第30-31页 |
| 3.1.3 试验仪器 | 第31页 |
| 3.1.4 尼罗红染色快速测定脂肪酸含量 | 第31-32页 |
| 3.1.5 GC/MS检测脂肪酸的方法 | 第32-33页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第33-43页 |
| 3.2.1 尼罗红正交结果分析 | 第33-36页 |
| 3.2.2 不同密度接种对小球藻脂肪酸含量的影响 | 第36-37页 |
| 3.2.3 不同密度接种的小球藻中脂肪酸GC/MS分析 | 第37-42页 |
| 3.2.4 小结 | 第42-43页 |
| 第四章 小球藻代谢物提取方法的建立 | 第43-54页 |
| 4.1 材料与方法 | 第43-46页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第43页 |
| 4.1.2 溶液配制 | 第43-44页 |
| 4.1.3 试验仪器 | 第44页 |
| 4.1.4 培养基配制 | 第44页 |
| 4.1.5 小球藻破壁方法的确立 | 第44-45页 |
| 4.1.6 代谢物提取方法 | 第45-46页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第46-52页 |
| 4.2.1 不同提取方法对氨基酸的提取效率的影响 | 第46-47页 |
| 4.2.2 不同提取方法对胺类物质的提取效率的影响 | 第47-48页 |
| 4.2.3 不同提取方法对有机酸的提取效率的影响 | 第48-49页 |
| 4.2.4 不同提取方法对碱基等的提取效率的影响 | 第49-50页 |
| 4.2.5 不同提取方法对多糖的提取效率的影响 | 第50-51页 |
| 4.2.6 不同提取方法对二糖的提取效率的影响 | 第51-52页 |
| 4.2.7 不同提取方法对其它小分子物质的提取效率的影响 | 第52页 |
| 4.3 小结 | 第52-54页 |
| 第五章 结论与展望 | 第54-56页 |
| 5.1 结论 | 第54页 |
| 5.2 展望 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-59页 |
| 致谢 | 第59页 |
