| 前言 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-10页 |
| Abstract | 第10-15页 |
| 绪论 | 第21-22页 |
| 第1章 文献综述 | 第22-54页 |
| 1.1 肾上腺髓质素的在骨代谢中的研究进展 | 第22-32页 |
| 1.1.1 肾上腺髓质素的特点 | 第22-26页 |
| 1.1.2 肾上腺髓质素在骨代谢过程中的作用 | 第26-28页 |
| 1.1.3 肾上腺髓质素在血管发生过程中的作用 | 第28-32页 |
| 1.1.4 小结 | 第32页 |
| 1.2 载药壳聚糖微球的研究进展 | 第32-43页 |
| 1.2.1 载药壳聚糖微球的制备方法 | 第35-40页 |
| 1.2.2 壳聚糖微/纳米颗粒的药物加载 | 第40-41页 |
| 1.2.3 壳聚糖微粒系统的药物应用 | 第41-43页 |
| 1.2.4 小结 | 第43页 |
| 1.3 骨支架材料的现状与进展 | 第43-54页 |
| 1.3.1 金属合金材料 | 第44页 |
| 1.3.2 生物陶瓷类材料 | 第44-50页 |
| 1.3.3 天然高分子聚合物 | 第50-51页 |
| 1.3.4 合成高分子聚合物 | 第51-54页 |
| 第2章 不同浓度肾上腺髓质素对MG63、HUVEC 增殖及分化的影响 | 第54-64页 |
| 2.1 材料及方法 | 第54-59页 |
| 2.1.1 主要实验仪器及设备 | 第54-55页 |
| 2.1.2 主要材料与试剂 | 第55页 |
| 2.1.3 梯度浓度肾上腺髓质素的配置 | 第55页 |
| 2.1.4 细胞培养 | 第55-57页 |
| 2.1.5 MTT 法检测肾上腺髓质素细胞增殖活力 | 第57-58页 |
| 2.1.6 比色法测定MG63 内碱性磷酸酶的表达 | 第58页 |
| 2.1.7 统计学分析 | 第58-59页 |
| 2.2 结果 | 第59-61页 |
| 2.2.1 不同浓度ADM 对MG63 细胞增殖活性的影响 | 第59页 |
| 2.2.2 不同浓度ADM 对HUVEC 细胞增殖活性的影响 | 第59-60页 |
| 2.2.3 不同浓度ADM 对MG63 细胞分化能力的影响 | 第60-61页 |
| 2.3 讨论 | 第61-63页 |
| 2.4 小结 | 第63-64页 |
| 第3章 载肾上腺髓质素微球复合PLGA/纳米羟基磷灰石支架材料的制备、表征及其降解研究 | 第64-79页 |
| 3.1 材料及方法 | 第64-68页 |
| 3.1.1 主要实验仪器及设备 | 第64-65页 |
| 3.1.2 主要材料与试剂 | 第65页 |
| 3.1.3 壳聚糖微球（CMs）的制备 | 第65页 |
| 3.1.4 PLGA/nHA 支架材料的制备 | 第65-66页 |
| 3.1.5 微球及支架材料的扫描电镜观察 | 第66页 |
| 3.1.6 微球中多肽的载药率和包封率的分析 | 第66页 |
| 3.1.7 载药微球及支架材料的体外释放行为 | 第66页 |
| 3.1.8 支架材料的孔隙率和密度 | 第66-67页 |
| 3.1.9 复合支架材料的体外降解 | 第67页 |
| 3.1.10 复合支架材料的体内降解 | 第67-68页 |
| 3.1.11 复合支架材料抗压强度 | 第68页 |
| 3.1.12 统计学分析 | 第68页 |
| 3.2 结果 | 第68-74页 |
| 3.2.1 扫描电镜观察TPP-壳聚糖微球及PLGA/nHA 支架材料的表面形貌 | 第68-69页 |
| 3.2.2 微球中多肽的载药率和包封率 | 第69-70页 |
| 3.2.3 载药微球及支架材料的体外释放 | 第70页 |
| 3.2.4 支架材料的孔隙率和密度 | 第70-71页 |
| 3.2.5 复合支架材料的体外降解 | 第71-73页 |
| 3.2.6 复合支架材料的体内降解失重率 | 第73页 |
| 3.2.7 复合支架材料的机械性能 | 第73-74页 |
| 3.3 讨论 | 第74-78页 |
| 3.3.1 TPP-壳聚糖微球及PLGA/nHA 支架材料的制备及表征 | 第74-76页 |
| 3.3.2 复合支架材料的降解 | 第76-78页 |
| 3.4 小结 | 第78-79页 |
| 第4章 载药复合支架材料对MG-63、HUVEC 增殖及分化的影响 | 第79-87页 |
| 4.1 材料及方法 | 第79-82页 |
| 4.1.1 主要实验仪器及设备 | 第79页 |
| 4.1.2 主要材料与试剂 | 第79-80页 |
| 4.1.3 复合支架材料的标本制备 | 第80页 |
| 4.1.4 复合空白微球的支架材料的体外溶血实验 | 第80-81页 |
| 4.1.5 复合支架材料对成骨细胞及血管内皮细胞的增殖的影响 | 第81页 |
| 4.1.6 MG63、HUVEC 细胞在支架材料上的生长状况 | 第81页 |
| 4.1.7 复合支架材料对成骨细胞分化能力的影响 | 第81页 |
| 4.1.8 数据分析 | 第81-82页 |
| 4.2 结果 | 第82-84页 |
| 4.2.1 载空白微球支架材料的体外溶血行为 | 第82页 |
| 4.2.2 复合支架材料对成骨细胞及血管内皮细胞的增殖的影响 | 第82-83页 |
| 4.2.3 MG63、HUVEC 细胞在支架材料上的生长状况 | 第83页 |
| 4.2.4 复合支架材料对成骨细胞分化的影响 | 第83-84页 |
| 4.3 讨论 | 第84-86页 |
| 4.4 小结 | 第86-87页 |
| 第5章 载ADM 复合支架材料对MG63、HUVEC 相关功能基因及蛋白的影响 | 第87-107页 |
| 5.1 材料及方法 | 第87-95页 |
| 5.1.1 主要实验仪器及设备 | 第87-88页 |
| 5.1.2 主要材料与试剂 | 第88页 |
| 5.1.3 主要试剂的配方及配置方法 | 第88-89页 |
| 5.1.4 载药复合支架材料表面MG-63、HUVEC 细胞相关基因表达. | 第89-93页 |
| 5.1.5 载药复合支架材料表面MG-63、HUVEC 细胞相关蛋白的表达 | 第93-94页 |
| 5.1.6 数据分析 | 第94-95页 |
| 5.2 结果 | 第95-101页 |
| 5.2.1 Real time PCR 检测MG-63、HUVEC 细胞相关基因表达量 | 第95-99页 |
| 5.2.2 Western Blot 检测MG-63、HUVEC 细胞相关蛋白表达量 | 第99-101页 |
| 5.3 讨论 | 第101-106页 |
| 5.4 小结 | 第106-107页 |
| 第6章 结论 | 第107-108页 |
| 参考文献 | 第108-124页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第124-126页 |
| 致谢 | 第126-127页 |
