| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 前言 | 第11-22页 |
| 1.1 多糖的定义 | 第11页 |
| 1.2 多糖结构研究的主要内容 | 第11-19页 |
| 1.2.1 提取 | 第11-12页 |
| 1.2.2 分离和纯化 | 第12-15页 |
| 1.2.2.1 脱蛋白 | 第12页 |
| 1.2.2.2 脱色素 | 第12-13页 |
| 1.2.2.3 多糖的纯化 | 第13-15页 |
| 1.2.3 纯度鉴定 | 第15页 |
| 1.2.4 分子量测定 | 第15-16页 |
| 1.2.5 单糖组成分析 | 第16页 |
| 1.2.6 部分酸水解 | 第16页 |
| 1.2.7 高碘酸氧化和Smith降解 | 第16-17页 |
| 1.2.8 甲基化分析 | 第17页 |
| 1.2.9 波谱分析 | 第17-18页 |
| 1.2.9.1 红外光谱(IR) | 第17页 |
| 1.2.9.2 核磁共振波谱(~(13)C与~1HNMR) | 第17-18页 |
| 1.2.10 多糖的构象表征 | 第18-19页 |
| 1.3 红芪多糖的研究进展 | 第19-20页 |
| 1.3.1 红芪概述 | 第19页 |
| 1.3.2 红芪多糖研究进展 | 第19-20页 |
| 1.3.2.1 红芪多糖的药理活性研究进展 | 第19-20页 |
| 1.3.2.2 红芪多糖的结构研究进展 | 第20页 |
| 1.4 本文立题依据及研究内容 | 第20-22页 |
| 第二章 红芪多糖的提取、分离和纯化 | 第22-30页 |
| 2.1 实验部分 | 第22-25页 |
| 2.1.1 实验材料与仪器 | 第22页 |
| 2.1.1.1 实验材料与试剂 | 第22页 |
| 2.1.1.2 实验仪器 | 第22页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第22-25页 |
| 2.1.2.1 HPS4的提取 | 第22-23页 |
| 2.1.2.2 HPS4脱蛋白、脱色素 | 第23页 |
| 2.1.2.3 HPS4-1与HPS4-2的分离纯化 | 第23-24页 |
| 2.1.2.4 HPS4中四组分的纯度鉴定 | 第24-25页 |
| 2.1.2.5 多糖的含量测定 | 第25页 |
| 2.2 实验结果与讨论 | 第25-30页 |
| 2.2.1 HPS4的提取 | 第25-26页 |
| 2.2.2 脱蛋白,脱色素 | 第26页 |
| 2.2.3 HPS4的分离纯化 | 第26-27页 |
| 2.2.4 HPS4中四多糖组分的纯度鉴定 | 第27-30页 |
| 第三章 红芪多糖的理化性质研究及构象研究 | 第30-41页 |
| 3.1 实验部分 | 第30-33页 |
| 3.1.1 实验材料与仪器 | 第30页 |
| 3.1.1.1 实验材料与试剂 | 第30页 |
| 3.1.1.2 实验仪器 | 第30页 |
| 3.1.2 红芪多糖理化性质研究 | 第30-33页 |
| 3.1.2.1 HPS4中四组分的总糖含量测定 | 第30页 |
| 3.1.2.2 HPS4中四组分蛋白质含量测定 | 第30-31页 |
| 3.1.2.3 HPS4中四组分元素分析 | 第31页 |
| 3.1.2.4 HPS4中四组分单糖组成测定 | 第31-32页 |
| 3.1.2.5 HPS4中四组分糖醛酸的测定 | 第32页 |
| 3.1.2.6 HPS4中四组分分子量的测定 | 第32-33页 |
| 3.1.3 红芪多糖构象研究 | 第33页 |
| 3.2 实验结果与讨论 | 第33-41页 |
| 3.2.1 HPS4中四组分的总糖含量测定 | 第33页 |
| 3.2.2 HPS4中四组分的元素分析结果 | 第33-34页 |
| 3.2.3 HPS4中四组分的蛋白质含量测定及糖醛酸测定 | 第34页 |
| 3.2.4 HPS4中四组分的单糖组成测定 | 第34-36页 |
| 3.2.5 HPS4中四组分的分子量测定结果及构象的初步分析 | 第36-39页 |
| 3.2.5.1 相对分子量的测定结果 | 第36-37页 |
| 3.2.5.2 绝对分子量的测定结果 | 第37-39页 |
| 3.2.6 HPS4中HPS4-1B,HPS4-1C及HPS4-2A三组分的构象分析 | 第39-41页 |
| 第四章 红芪多糖HPS4-1A与HPS4-2A的结构研究 | 第41-59页 |
| 4.1 实验部分 | 第41-44页 |
| 4.1.1 实验材料与仪器 | 第41页 |
| 4.1.1.1 实验材料与试剂 | 第41页 |
| 4.1.1.2 实验仪器 | 第41页 |
| 4.1.2 实验方法 | 第41-44页 |
| 4.1.2.1 部分酸水解 | 第41-42页 |
| 4.1.2.1 甲基化 | 第42-44页 |
| 4.1.2.2 红外光谱谱分析 | 第44页 |
| 4.1.2.3 核磁共振波谱分析 | 第44页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第44-59页 |
| 4.2.1 部分酸水解结果 | 第44-45页 |
| 4.2.2 甲基化结果 | 第45-49页 |
| 4.2.2.1 HPS4-1A的甲基化结果 | 第45-47页 |
| 4.2.2.2 HPS4-2A的甲基化结果 | 第47-49页 |
| 4.2.3 红外分析结果 | 第49-50页 |
| 4.2.3.1 HPS4-2A的红外分析结果 | 第49-50页 |
| 4.2.4 核磁共振波谱(NMR)分析结果 | 第50-59页 |
| 4.2.4.1 HPS4-1A的核磁共振波谱分析结果 | 第50-51页 |
| 4.2.4.2 HPS4-2A的核磁共振波谱分析结果 | 第51-59页 |
| 第五章 红芪多糖的抗氧化活性和抗凝血活性研究 | 第59-67页 |
| 5.1 实验部分 | 第59-60页 |
| 5.1.1 实验材料与仪器 | 第59页 |
| 5.1.1.1 实验材料与试剂 | 第59页 |
| 5.1.1.2 实验仪器 | 第59页 |
| 5.1.2 实验方法 | 第59-60页 |
| 5.1.2.1 抗凝血实验方法 | 第59-60页 |
| 5.1.2.2 抗氧化实验方法 | 第60页 |
| 5.2 实验结果与讨论 | 第60-67页 |
| 5.2.1 HPS4及HPS4中四组分的抗凝血实验结果 | 第60-63页 |
| 5.2.2 HPS4及HPS4中四组分的抗氧化实验结果 | 第63-67页 |
| 第六章 结论 | 第67-69页 |
| 参考文献 | 第69-75页 |
| 附图 | 第75-83页 |
| 硕士期间发表的论文及科研成果 | 第83-84页 |
| 致谢 | 第84页 |
