| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-17页 |
| 研究现状 | 第13-14页 |
| 研究目的 | 第14页 |
| 研究方法 | 第14-17页 |
| 一、糖链抗原125均相发光免疫检测体系的建立及反应条件优化 | 第17-37页 |
| 1 材料与方法 | 第17-23页 |
| 1.1 实验材料 | 第17-19页 |
| 1.1.1 实验器材 | 第17页 |
| 1.1.2 化学试剂 | 第17-18页 |
| 1.1.3 生物试剂 | 第18页 |
| 1.1.4 试剂配制 | 第18-19页 |
| 1.2 实验方法 | 第19-23页 |
| 1.2.1 抗体筛选 | 第19页 |
| 1.2.2 抗体生物素化 | 第19-20页 |
| 1.2.3 抗体包被受体微球 | 第20-21页 |
| 1.2.4 校准品和临床标本 | 第21-22页 |
| 1.2.5 最佳抗体对的确定 | 第22页 |
| 1.2.6 反应条件的优化 | 第22页 |
| 1.2.7 检测体系的建立 | 第22-23页 |
| 2 结果 | 第23-33页 |
| 2.1 抗体组合筛选 | 第23-24页 |
| 2.2 生物素化抗体及抗体包被受体微球最适反应浓度 | 第24-25页 |
| 2.3 检测缓冲液的优化 | 第25-26页 |
| 2.4 供体微球的加样量 | 第26-27页 |
| 2.5 待测物与CA-125抗体包被受体微球的加样量优化 | 第27-29页 |
| 2.6 加样顺序的优化 | 第29页 |
| 2.7 第一阶段反应时间优化 | 第29-31页 |
| 2.8 第二阶段反应时间优化 | 第31-32页 |
| 2.9 检测体系的确定 | 第32-33页 |
| 3 讨论 | 第33-36页 |
| 3.1 均相免疫分析与非均相免疫分析 | 第33-34页 |
| 3.2 方法建立及检测条件的优化 | 第34-36页 |
| 3.2.1 CA125抗体筛选和抗体配对 | 第34-35页 |
| 3.2.2 检测条件优化 | 第35-36页 |
| 4 小结 | 第36-37页 |
| 二、糖链抗原125均相免疫检测体系的方法学及临床评价 | 第37-46页 |
| 1 材料与方法 | 第37-41页 |
| 1.1 实验材料 | 第37-38页 |
| 1.1.1 实验仪器 | 第37页 |
| 1.1.2 试剂组成 | 第37页 |
| 1.1.3 临床标本、质控品及校准品 | 第37-38页 |
| 1.2 实验方法 | 第38-41页 |
| 1.2.1 测定方法 | 第38页 |
| 1.2.2 方法学评价 | 第38-39页 |
| 1.2.3 临床评价 | 第39-41页 |
| 2 结果 | 第41-43页 |
| 2.1 方法学评价 | 第41-43页 |
| 2.1.1 灵敏度 | 第41页 |
| 2.1.2 准确性 | 第41页 |
| 2.1.3 精密度 | 第41-42页 |
| 2.1.4 特异性 | 第42页 |
| 2.1.5 稳定性 | 第42页 |
| 2.1.6 Z因子 | 第42-43页 |
| 2.1.7 相关性分析 | 第43页 |
| 2.1.8 健康查体者CA125浓度范围 | 第43页 |
| 2.2 临床评价 | 第43页 |
| 2.2.1 χ~2检验 | 第43页 |
| 2.2.2 一致性分析 | 第43页 |
| 3 讨论 | 第43-46页 |
| 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-49页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第49-50页 |
| 附录 | 第50-67页 |
| 综述 鲁米诺氧途径免疫分析技术研究进展及应用 | 第67-80页 |
| 综述参考文献 | 第76-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
