| 摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 第一章 绪论 | 第13-45页 |
| 1.1 引言 | 第13-14页 |
| 1.2 模拟蛋白酶 | 第14-19页 |
| 1.2.1 蛋白酶简介 | 第14-15页 |
| 1.2.2 蛋白质水解 | 第15页 |
| 1.2.3 模拟蛋白酶研究进展 | 第15-19页 |
| 1.3 过氧化物模拟酶 | 第19-25页 |
| 1.3.1 过氧化物酶简介 | 第19页 |
| 1.3.2 过氧化物模拟酶研究进展 | 第19-25页 |
| 1.4 癌细胞检测 | 第25-27页 |
| 1.4.1 对癌症生物标志物的检测 | 第26页 |
| 1.4.2 表面等离子体共振检测 | 第26-27页 |
| 1.4.3 荧光检测 | 第27页 |
| 1.5 癌症治疗 | 第27-29页 |
| 1.5.1 纳米载药抗癌 | 第28页 |
| 1.5.2 纳米材料抗癌 | 第28-29页 |
| 1.6 金属有机骨架化合物简介 | 第29-40页 |
| 1.6.1 金属有机骨架化合物的类型 | 第30-31页 |
| 1.6.2 金属有机骨架化合物的合成 | 第31-32页 |
| 1.6.3 金属有机骨架材料的应用 | 第32-40页 |
| 1.7 选题依据及研究内容 | 第40-45页 |
| 1.7.1 选题依据 | 第40-43页 |
| 1.7.2 研究内容 | 第43-44页 |
| 1.7.3 论文的创新点 | 第44-45页 |
| 第二章 实验部分 | 第45-61页 |
| 2.1 化学试剂及仪器 | 第45-48页 |
| 2.2 材料制备 | 第48-49页 |
| 2.3 材料表征 | 第49-51页 |
| 2.3.1 X射线衍射分析 | 第49页 |
| 2.3.2 比表面积和孔结构测定 | 第49-50页 |
| 2.3.3 傅里叶变换红外光谱(FT-IR) | 第50页 |
| 2.3.4 扫描电镜(SEM) | 第50页 |
| 2.3.5 透射电镜(TEM) | 第50页 |
| 2.3.6 紫外-可见分光光度法(UV-Vis) | 第50-51页 |
| 2.4 Cu-MOF模拟蛋白酶催化水解蛋白 | 第51-53页 |
| 2.4.1 催化能力的测定 | 第51页 |
| 2.4.2 催化动力学数据测定 | 第51-52页 |
| 2.4.3 Cu-MOF模拟蛋白酶消化细胞 | 第52-53页 |
| 2.5 Fe-MIL-101模拟过氧化物酶 | 第53-56页 |
| 2.5.1 叶酸含量测定 | 第53页 |
| 2.5.2 催化能力测定 | 第53页 |
| 2.5.3 催化动力学数据测定 | 第53-54页 |
| 2.5.4 羟基自由基的测定 | 第54-55页 |
| 2.5.5 细胞培养 | 第55页 |
| 2.5.6 细胞存活率 | 第55页 |
| 2.5.7 比色法检测癌细胞 | 第55-56页 |
| 2.6 Fe-MIL-101和Cu-MOF对SKOV3的作用 | 第56-61页 |
| 2.6.1 细胞培养 | 第56页 |
| 2.6.2 细胞毒性 | 第56页 |
| 2.6.3 青蒿琥酯的负载 | 第56-57页 |
| 2.6.4 阿霉素的负载 | 第57页 |
| 2.6.5 条件培养基(SKOV3刺激液)收集 | 第57页 |
| 2.6.6 细胞凋亡检测 | 第57-59页 |
| 2.6.7 细胞周期 | 第59页 |
| 2.6.8 细胞划痕 | 第59页 |
| 2.6.9 体外血管生成 | 第59-60页 |
| 2.6.10 Western Blot | 第60页 |
| 2.6.11 F-actin荧光染色 | 第60-61页 |
| 第三章 Cu-MOF模拟蛋白酶及其应用于细胞消化 | 第61-79页 |
| 3.1 前言 | 第61-62页 |
| 3.2 Cu-MOF的合成与表征 | 第62-64页 |
| 3.2.1 XRD分析 | 第62页 |
| 3.2.2 N_2吸附-脱附分析 | 第62-63页 |
| 3.2.3 红外光谱 | 第63-64页 |
| 3.2.4 SEM及TEM表征 | 第64页 |
| 3.3 Cu-MOF催化水解蛋白质 | 第64-75页 |
| 3.3.1 Cu-MOF催化水解蛋白质 | 第64-66页 |
| 3.3.2 Cu-MOF催化水解蛋白质影响因素 | 第66-68页 |
| 3.3.3 催化剂循环使用 | 第68-69页 |
| 3.3.4 反应机理 | 第69-72页 |
| 3.3.5 Cu-MOF水解蛋白动力学参数 | 第72-75页 |
| 3.4 模拟胰酶消化细胞 | 第75-77页 |
| 3.5 小结 | 第77-79页 |
| 第四章 Fe-MIL-101模拟过氧化物酶及其应用于癌细胞检测 | 第79-101页 |
| 4.0 前言 | 第79-81页 |
| 4.1 Fe-MIL-101的合成与表征 | 第81-83页 |
| 4.1.1 XRD分析 | 第81页 |
| 4.1.2 N_2吸附-脱附分析 | 第81-82页 |
| 4.1.3 SEM及TEM表征 | 第82-83页 |
| 4.2 Fe-MIL-101-FA的合成与表征 | 第83-84页 |
| 4.2.1 红外光谱 | 第83-84页 |
| 4.2.2 Zeta电位和颗粒大小 | 第84页 |
| 4.2.3 叶酸含量测定 | 第84页 |
| 4.3 Fe-MIL-101模拟过氧化物酶 | 第84-94页 |
| 4.3.1 Fe-MIL-101催化水解TMB | 第84-85页 |
| 4.3.2 Fe-MIL-101催化水解TMB影响因素 | 第85-88页 |
| 4.3.3 Fe-MIL-101和Fe-MIL-101-FA模拟酶动力学参数 | 第88-93页 |
| 4.3.4 Fe-MIL-101模拟过氧化物酶催化ABTS氧化 | 第93-94页 |
| 4.4 催化剂的稳定性 | 第94-95页 |
| 4.5 反应机理 | 第95-96页 |
| 4.6 Fe-MIL-101-FA模拟过氧化物酶检测癌细胞 | 第96-100页 |
| 4.6.1 细胞存活率 | 第96-97页 |
| 4.6.2 细胞检测结果 | 第97-100页 |
| 4.7 小结 | 第100-101页 |
| 第五章 Fe-MIL-101抑制卵巢癌SKOV3的作用机理研究 | 第101-123页 |
| 5.1 前言 | 第101-103页 |
| 5.2 青蒿琥酯和阿霉素的负载量 | 第103-104页 |
| 5.2.1 青蒿琥酯负载量 | 第103-104页 |
| 5.2.2 阿霉素负载量 | 第104页 |
| 5.3 Fe-MIL-101抑制细胞增殖作用 | 第104-110页 |
| 5.4 Fe-MIL-101诱导SKOV3和HUVEC细胞凋亡 | 第110-113页 |
| 5.5 Fe-MIL-101对SKOV3和HUVEC细胞周期的影响 | 第113-115页 |
| 5.6 Fe-MIL-101抑制SKOV3和HUVEC细胞迁移 | 第115-116页 |
| 5.7 Fe-MIL-101抑制血管生成 | 第116-120页 |
| 5.8 Fe-MIL-101对SKOV3和HUVEC细胞MMP-2和MMP-9的影响 | 第120-122页 |
| 5.9 小结 | 第122-123页 |
| 第六章 Cu-MOF抑制卵巢癌SKOV3的作用机理研究 | 第123-133页 |
| 6.1 前言 | 第123-124页 |
| 6.2 Cu-MOF抑制细胞增殖作用 | 第124-125页 |
| 6.3 Cu-MOF诱导SKOV3细胞凋亡 | 第125-127页 |
| 6.4 Cu-MOF对SKOV3细胞周期的影响 | 第127页 |
| 6.5 Cu-MOF抑制SKOV3细胞迁移 | 第127-128页 |
| 6.6 Cu-MOF对血管生成的作用 | 第128-129页 |
| 6.7 Cu-MOF对SKOV3细胞F-actin的影响 | 第129-131页 |
| 6.8 Cu-MOF对SKOV3细胞MMP-2/9和actin的影响 | 第131-132页 |
| 6.9 小结 | 第132-133页 |
| 第七章 结论与展望 | 第133-137页 |
| 7.1 主要结论 | 第133-134页 |
| 7.2 展望 | 第134-137页 |
| 参考文献 | 第137-153页 |
| 在读期间科研成果 | 第153-155页 |
| 致谢 | 第155-156页 |
