| 摘要 | 第8-9页 |
| 英文摘要 | 第9-10页 |
| 1 引言 | 第11-19页 |
| 1.1 REV研究进展 | 第11-15页 |
| 1.1.1 REV分子生物学特征 | 第11-12页 |
| 1.1.2 RE的流行病学 | 第12-13页 |
| 1.1.3 RE的临床症状与病理变化 | 第13页 |
| 1.1.4 REV的免疫抑制作用 | 第13-14页 |
| 1.1.5 RE的鉴别诊断 | 第14-15页 |
| 1.1.6 RE的防治 | 第15页 |
| 1.2 TGF-β1 研究进展 | 第15-18页 |
| 1.2.1 TGF-β1 概述 | 第15页 |
| 1.2.2 TGF-β1 的信号传导通路 | 第15-16页 |
| 1.2.3 TGF-β1 的生物学功能 | 第16-18页 |
| 1.3 本项研究的目的与意义 | 第18-19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-28页 |
| 2.1 试验材料 | 第19-20页 |
| 2.1.1 试验动物 | 第19页 |
| 2.1.2 REV毒株 | 第19页 |
| 2.1.3 主要生物试剂及化学试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.4 主要仪器设备 | 第20页 |
| 2.2 试验方法 | 第20-27页 |
| 2.2.1 试验动物分组 | 第20页 |
| 2.2.2 被检材料采取 | 第20-21页 |
| 2.2.3 检测指标与方法 | 第21-27页 |
| 2.3 数据处理 | 第27-28页 |
| 3 结果与分析 | 第28-48页 |
| 3.1 SPF雏鸡感染REV后外周血液和免疫器官TGF-β1mRNA表达变化 | 第28-39页 |
| 3.1.1 总RNA的提取 | 第28-29页 |
| 3.1.2 活化菌液重组质粒PCR鉴定 | 第29-30页 |
| 3.1.3 标准曲线的绘制 | 第30-32页 |
| 3.1.4 REV感染对SPF雏鸡外周血液TGF-β1 和 β-actin mRNA表达检测 | 第32-33页 |
| 3.1.5 REV感染SPF雏鸡外周血液TGF-β1mRNA表达变化 | 第33-34页 |
| 3.1.6 REV感染对SPF雏鸡免疫器官TGF-β1 和 β-actin mRNA表达检测 | 第34-36页 |
| 3.1.7 REV感染SPF雏鸡免疫器官TGF-β1mRNA表达变化 | 第36-39页 |
| 3.2 鸡TGF-β1 的原核表达及多克隆抗体制备 | 第39-43页 |
| 3.2.1 鸡TGF-β1 基因克隆及序列分析 | 第39-40页 |
| 3.2.2 重组蛋白表达条件优化 | 第40-41页 |
| 3.2.3 SDS-PAGE分析蛋白表达位置 | 第41页 |
| 3.2.4 重组蛋白切胶纯化 | 第41-42页 |
| 3.2.5 融合蛋白Western blotting检测 | 第42页 |
| 3.2.6 Western blotting检测多克隆抗体的特异性 | 第42-43页 |
| 3.2.7 兔抗鸡TGF-β1 多克隆抗体效价测定 | 第43页 |
| 3.3 SPF雏鸡感染REV外周血液和免疫器官TGF-β1 含量变化 | 第43-48页 |
| 3.3.1 SPF雏鸡感染REV后外周血液TGF-β1 含量变化 | 第43-44页 |
| 3.3.2 SPF雏鸡感染REV后免疫器官TGF-β1 含量变化 | 第44-48页 |
| 4 讨论 | 第48-52页 |
| 4.1 REV感染对雏鸡外周血液TGF-β1 含量的影响 | 第48-49页 |
| 4.2 REV感染对SPF雏鸡免疫器官TGF-β1 含量的影响 | 第49-52页 |
| 4.2.1 REV感染对SPF雏鸡免疫器官TGF-β1mRNA表达的影响 | 第49-50页 |
| 4.2.2 REV感染对SPF雏鸡免疫器官TGF-β1 含量的影响 | 第50-52页 |
| 5 结论 | 第52-53页 |
| 致谢 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-61页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第61页 |
