| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 中英文缩略语表 | 第6-9页 |
| 1 选题依据 | 第9-10页 |
| 2 文献综述 | 第10-16页 |
| 2.1 细胞的自噬现象 | 第10-11页 |
| 2.1.1 细胞自噬与分类 | 第10页 |
| 2.1.2 细胞自噬机制 | 第10-11页 |
| 2.2 自噬相关因子 | 第11-13页 |
| 2.3 特殊环境对自噬的影响 | 第13-16页 |
| 2.3.1 低氧与自噬 | 第13-14页 |
| 2.3.2 运动与细胞自噬 | 第14-16页 |
| 3 材料与方法 | 第16-26页 |
| 3.1 实验动物 | 第16页 |
| 3.2 实验方法与取材 | 第16页 |
| 3.2.1 训练方案与分组 | 第16页 |
| 3.2.2 取材 | 第16页 |
| 3.3 RT-PCR检测腓肠肌Beclin-1、P62和LC3 mRNA表达的测定 | 第16-20页 |
| 3.3.1 指标的测定 | 第16-17页 |
| 3.3.2 骨骼肌总RNA的提取 | 第17页 |
| 3.3.3 1%浓度琼脂糖凝胶测量骨骼肌中总RNA的完整性 | 第17-18页 |
| 3.3.4 骨骼肌中总RNA纯度检验与浓度测定 | 第18页 |
| 3.3.5 反转录生成cDNA（SYBR~?Green分析法） | 第18-19页 |
| 3.3.6 引物的设计 | 第19页 |
| 3.3.7 实时荧光定量PCR反应 | 第19-20页 |
| 3.4 Westent blot法检测腓肠肌Beclin-1、P62和LC3蛋白表达的测定 | 第20-24页 |
| 3.4.1 实验试剂的准备 | 第20-21页 |
| 3.4.2 组织样本总蛋白的提取 | 第21-22页 |
| 3.4.3 SDS-PAGE凝胶电泳 | 第22-24页 |
| 3.5 实验试剂与仪器 | 第24-25页 |
| 3.5.1 实验试剂 | 第24-25页 |
| 3.5.2 实验仪器 | 第25页 |
| 3.6 数据处理 | 第25-26页 |
| 4 实验结果 | 第26-28页 |
| 4.1 各组大鼠骨骼肌相关自噬因子的变化 | 第26-28页 |
| 4.1.1 各组大鼠Beclin-1 相对表达量的时序性变化 | 第26页 |
| 4.1.2 各组大鼠P62相对表达量的时序性变化 | 第26-27页 |
| 4.1.3 各组大鼠LC3相对表达量的时序性变化 | 第27-28页 |
| 5 分析讨论 | 第28-32页 |
| 5.1 低氧训练对自噬相关因子Beclin-1 表达的影响 | 第28-29页 |
| 5.2 低氧训练对自噬相关因子P62表达的影响 | 第29-30页 |
| 5.3 低氧训练对自噬相关因子LC3表达的影响 | 第30-32页 |
| 6 结论 | 第32-33页 |
| 参考文献 | 第33-38页 |
| 致谢 | 第38页 |
