| 中文摘要 | 第4-8页 |
| Abstract | 第8-12页 |
| 第1章 绪论 | 第17-33页 |
| 1.1 周围神经损伤后变性、再生及修复 | 第17-22页 |
| 1.1.1 周围神经损伤后的病理生理改变 | 第17-19页 |
| 1.1.2 周围神经损伤分级 | 第19-20页 |
| 1.1.3 周围神经损伤后修复的时间窗 | 第20页 |
| 1.1.4 周围神经损伤后神经修复的方法 | 第20-22页 |
| 1.2 新型组织工程材料在周围神经损伤修复中的应用研究 | 第22-28页 |
| 1.2.1 第一代神经鞘管 | 第23-24页 |
| 1.2.2 第二代神经鞘管 | 第24-28页 |
| 1.2.3 第三代神经鞘管 | 第28页 |
| 1.3 神经营养因子在周围神经损伤修复中的作用 | 第28-33页 |
| 1.3.1 神经生长因子（NGF）家族 | 第29-30页 |
| 1.3.2 成纤维细胞生长因子（FGF） | 第30页 |
| 1.3.3 其他NTFs | 第30-33页 |
| 第2章 生物降解PLGA/PCL神经修复导管的制备与表征 | 第33-47页 |
| 引言 | 第33-34页 |
| 2.1 材料与方法 | 第34-36页 |
| 2.1.1 实验仪器和材料 | 第34页 |
| 2.1.2 制备方法 | 第34页 |
| 2.1.3 PLGA/PCL膜厚度测量 | 第34-35页 |
| 2.1.4 场发射扫描电镜（ESEM）分析 | 第35页 |
| 2.1.5 力学性能（拉伸测试） | 第35页 |
| 2.1.6 N2吸附测试 | 第35页 |
| 2.1.7 BSA蛋白吸附测试 | 第35页 |
| 2.1.8 体外降解 | 第35-36页 |
| 2.1.9 统计与分析 | 第36页 |
| 2.2 结果 | 第36-40页 |
| 2.2.1 新型PLGA/PCL神经修复导管的制备 | 第36-39页 |
| 2.2.2 力学强度 | 第39页 |
| 2.2.3 蛋白吸附能力 | 第39页 |
| 2.2.4 体外降解 | 第39-40页 |
| 2.3 讨论 | 第40-45页 |
| 2.4 小结 | 第45-47页 |
| 第3章 PLGA/PCL神经修复导管的生物相容性研究 | 第47-59页 |
| 引言 | 第47-48页 |
| 3.1 材料和方法 | 第48-52页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第48-49页 |
| 3.1.2 细胞毒性实验 | 第49-50页 |
| 3.1.3 全身急性毒性实验 | 第50-51页 |
| 3.1.4 热原实验 | 第51-52页 |
| 3.1.5 统计学处理 | 第52页 |
| 3.2 结果 | 第52-55页 |
| 3.2.1 细胞毒性实验结果 | 第52-53页 |
| 3.2.2 全身急性毒性实验结果 | 第53-54页 |
| 3.2.3 热原反应实验结果 | 第54-55页 |
| 3.3 讨论 | 第55-58页 |
| 3.3.1 细胞毒性 | 第55-57页 |
| 3.3.2 全身急性毒性实验 | 第57页 |
| 3.3.3 热原实验 | 第57-58页 |
| 3.4 小结 | 第58-59页 |
| 第4章 PLGA/PCL生物膜修复大鼠坐骨神经缺损实验 | 第59-81页 |
| 4.1 材料与方法 | 第60页 |
| 4.1.1 实验材料及试剂 | 第60页 |
| 4.1.2 主要实验仪器和器材 | 第60页 |
| 4.2 实验动物分组及数据处理 | 第60-61页 |
| 4.2.1 实验动物 | 第60-61页 |
| 4.2.2 实验数据处理 | 第61页 |
| 4.3 实验方法 | 第61-64页 |
| 4.3.1 术前准备 | 第61-62页 |
| 4.3.2 动物模型的建立 | 第62-64页 |
| 4.3.3 动物的饲养与管理 | 第64页 |
| 4.4 观察指标 | 第64-65页 |
| 4.4.1 大体观察 | 第64页 |
| 4.4.2 神经功能检测 | 第64-65页 |
| 4.4.3 组织学检查 | 第65页 |
| 4.5 结果 | 第65-75页 |
| 4.5.1 大体观察 | 第65-66页 |
| 4.5.2 神经功能检测结果 | 第66-69页 |
| 4.5.3 组织病理实验结果 | 第69-75页 |
| 4.6 讨论 | 第75-80页 |
| 4.7 本章小结 | 第80-81页 |
| 第5章 结论 | 第81-83页 |
| 参考文献 | 第83-99页 |
| 作者简介及在博士期间取得的科研成果 | 第99-101页 |
| 致谢 | 第101-102页 |
