| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 中英文缩略词表 | 第12-13页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 1 Chang肝脏细胞体外培养 | 第16-22页 |
| 1.1 仪器与材料 | 第16-17页 |
| 1.1.1 实验仪器 | 第16页 |
| 1.1.2 细胞样品与试剂 | 第16-17页 |
| 1.2 方法 | 第17-19页 |
| 1.2.1 细胞复苏 | 第17页 |
| 1.2.2 细胞传代 | 第17页 |
| 1.2.3 细胞冻存 | 第17-18页 |
| 1.2.4 细胞计数 | 第18页 |
| 1.2.5 支原体污染检测 | 第18-19页 |
| 1.3 结果 | 第19-20页 |
| 1.3.1 Chang肝脏细胞生长状态 | 第19页 |
| 1.3.2 Chang肝脏细胞支原体检测 | 第19-20页 |
| 1.4 讨论 | 第20-22页 |
| 1.4.1 细胞复苏中的注意事项： | 第20页 |
| 1.4.2 细胞培养中预防污染的注意事项： | 第20-22页 |
| 2 药物对细胞活力影响研究 | 第22-29页 |
| 2.1 仪器与材料 | 第22-23页 |
| 2.1.1 仪器 | 第22页 |
| 2.1.2 材料 | 第22-23页 |
| 2.1.3 细胞样品与试剂 | 第23页 |
| 2.2 方法 | 第23-25页 |
| 2.2.1 细胞铺板 | 第23页 |
| 2.2.2 药物配制及处理 | 第23-25页 |
| 2.2.3 CCK-8 检测 | 第25页 |
| 2.2.4 统计分析 | 第25页 |
| 2.3 结果 | 第25-28页 |
| 2.4 讨论 | 第28-29页 |
| 3 DMSO对CYP3A4和CYP2C9蛋白表达的影响 | 第29-39页 |
| 3.1 仪器和材料 | 第29-30页 |
| 3.1.1 主要仪器 | 第29页 |
| 3.1.2 主要材料 | 第29-30页 |
| 3.2 实验方法 | 第30-35页 |
| 3.2.1 主要试剂配置 | 第30-31页 |
| 3.2.2 蛋白印迹法（Western blot） | 第31-34页 |
| 3.2.3 统计分析 | 第34-35页 |
| 3.3 结果 | 第35-38页 |
| 3.4 讨论 | 第38-39页 |
| 4 DMSO对CYP3A4、CYP2C9 mRNA表达的影响 | 第39-47页 |
| 4.1 仪器与材料 | 第39-40页 |
| 4.1.1 主要仪器 | 第39页 |
| 4.1.2 主要材料 | 第39-40页 |
| 4.2 实验方法 | 第40-43页 |
| 4.2.1 定量RT-PCR法 | 第40-42页 |
| 4.2.2 统计学分析 | 第42-43页 |
| 4.3 结果 | 第43-46页 |
| 4.3.1 CYP3A4、CYP2C9、GAPDH定量PCR溶解曲线 | 第43-44页 |
| 4.3.2 DMSO对CYP3A4、CYP2C9 mRNA水平的影响 | 第44-46页 |
| 4.4 讨论 | 第46-47页 |
| 5 药物对CYP3A4、CYP2C9蛋白表达的影响 | 第47-60页 |
| 5.1 仪器和材料 | 第47-48页 |
| 5.1.1 主要仪器 | 第47页 |
| 5.1.2 主要材料 | 第47-48页 |
| 5.2 实验方法 | 第48-52页 |
| 5.2.1 主要试剂配置 | 第48-49页 |
| 5.2.2 蛋白印迹法（Western blot） | 第49-52页 |
| 5.2.3 统计分析 | 第52页 |
| 5.3 结果 | 第52-58页 |
| 5.4 讨论 | 第58-60页 |
| 6 丹参主要成分对CYP3A4、CYP2C9 mRNA表达的影响 | 第60-72页 |
| 6.1 仪器与材料 | 第60-61页 |
| 6.1.1 主要仪器 | 第60页 |
| 6.1.2 主要材料 | 第60-61页 |
| 6.2 实验方法 | 第61-63页 |
| 6.2.1 定量RT-PCR法 | 第61-63页 |
| 6.2.2 统计学分析 | 第63页 |
| 6.3 结果 | 第63-69页 |
| 6.3.1 丹参主要成分对CYP3A4 mRNA水平的影响 | 第63-66页 |
| 6.3.2 丹参主要成分对CYP2C9 mRNA水平的影响 | 第66-69页 |
| 6.4 讨论 | 第69-72页 |
| 7 结论 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-79页 |
| 致谢 | 第79-81页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第81页 |
