英文缩略词 | 第6-7页 |
中文摘要 | 第7-10页 |
Abstract | 第10-13页 |
前言 | 第14-20页 |
参考文献 | 第16-20页 |
第一部分 α7nAchR激动剂DMXBA改善CRS小鼠学习记忆损伤和抑郁样行为 | 第20-30页 |
1. 实验材料 | 第20-21页 |
1.1 实验动物与分组 | 第20-21页 |
1.2 主要药品及试剂 | 第21页 |
1.3 主要仪器 | 第21页 |
1.4 相关溶液的配置 | 第21页 |
2. 实验方法 | 第21-24页 |
2.1 束缚应激模型的制备 | 第21-22页 |
2.2 Morris水迷宫实验 | 第22-23页 |
2.3 新事物认知实验 | 第23页 |
2.4 糖水消耗实验 | 第23页 |
2.5 强迫游泳实验 | 第23-24页 |
2.6 悬尾实验 | 第24页 |
2.7 统计学分析 | 第24页 |
3. 实验结果 | 第24-28页 |
1.DMXBA改善CRS小鼠的学习记忆功能障碍 | 第24-26页 |
2.DMXBA改善CRS小鼠的抑郁样行为 | 第26-28页 |
4.讨论 | 第28-29页 |
5.参考文献 | 第29-30页 |
第二部分 α7nAchR激动剂DMXBA对CRS小鼠神经元损伤的影响 | 第30-37页 |
1 实验材料 | 第30-31页 |
1.1 实验动物与分组 | 第30页 |
1.2 主要药品及试剂 | 第30页 |
1.3 主要仪器 | 第30-31页 |
1.4 相关溶液的配置 | 第31页 |
2.实验方法 | 第31-32页 |
2.1 小鼠心脏灌流 | 第31页 |
2.2 尼氏染色 | 第31-32页 |
2.3 高尔基银染 | 第32页 |
2.4 统计学分析 | 第32页 |
3.实验结果 | 第32-34页 |
3.1 DMXBA改善CRS小鼠海马CA1区神经细胞损伤 | 第32-33页 |
3.2 DMXBA增加CRS小鼠海马CA1区树突棘密度 | 第33-34页 |
4.讨论 | 第34-35页 |
5.参考文献 | 第35-37页 |
第三部分 α7nAchR激动剂DMXBA对CRS小鼠脑组织炎症反应的调节作用及机制 | 第37-54页 |
1.实验材料 | 第37-40页 |
1.1 实验动物与分组 | 第37页 |
1.2 主要药品及试剂 | 第37-38页 |
1.3 主要仪器 | 第38-39页 |
1.4 相关溶液的配置 | 第39-40页 |
2.实验方法 | 第40-41页 |
2.1 ELISA | 第40页 |
2.2 Western blotting | 第40-41页 |
2.2.1 总蛋白提取 | 第40页 |
2.2.2 核蛋白提取 | 第40页 |
2.2.3 蛋白印迹分析 | 第40-41页 |
2.3 统计学分析 | 第41页 |
3.实验结果 | 第41-51页 |
3.1 DMXBA下调CRS小鼠脑组织炎症因子IL-1β,TNF-α的含量 | 第41-43页 |
3.2 DMXBA下调CRS小鼠海马小胶质细胞,星形胶质细胞蛋白标记物Iba-1,GFAP的表达 | 第43-45页 |
3.3 DMXBA下调CRS小鼠海马的TLR4/NF-κB信号通路 | 第45-48页 |
3.4 DMXBA激活CRS小鼠海马的Ach抗炎信号通路 | 第48-51页 |
4.讨论 | 第51-52页 |
5.参考文献 | 第52-54页 |
第四部分 α7nAchR激动剂DMXBA对CRS小鼠Treg细胞数目的影响 | 第54-61页 |
1.实验材料 | 第54-55页 |
1.1 实验动物与分组 | 第54页 |
1.2 主要药品及试剂 | 第54页 |
1.3 主要仪器 | 第54-55页 |
2.实验方法 | 第55-56页 |
2.1 流式细胞术 | 第55页 |
2.2 统计学分析 | 第55-56页 |
3.实验结果 | 第56-59页 |
3.1 DMXBA上调CRS小鼠外周Treg细胞含量 | 第56-57页 |
3.2 DMXBA对CRS小鼠外周血炎症因子IL-1β,TNF-α无影响 | 第57-58页 |
3.3 DMXBA上调CRS小鼠中枢Treg细胞含量 | 第58-59页 |
4.讨论 | 第59-60页 |
5.参考文献 | 第60-61页 |
全文总结及创新点 | 第61-62页 |
综述 | 第62-72页 |
参考文献 | 第66-72页 |
硕士研究生期间发表的文章 | 第72-73页 |
致谢 | 第73页 |