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基于KLA的阳离子双亲性抗肿瘤多肽的设计及毒性机理研究

摘要第6-8页
ABSTRACT第8-9页
第一章 绪论第13-31页
    1.1 恶性肿瘤第13-14页
    1.2 阳离子双亲性多肽第14-21页
        1.2.1 阳离子双亲性多肽简介第14-16页
        1.2.2 阳离子双亲性多肽结构特点第16页
        1.2.3 阳离子双亲性多肽的应用第16-18页
        1.2.4 阳离子双亲性多肽的作用机制第18-21页
    1.3 KLA多肽及对KLA的优化第21-24页
    1.4 影响阳离子双亲性多肽生物活性的因素第24-29页
        1.4.1 阳离子氨基酸组成的影响第24-26页
        1.4.2 疏水性的影响第26-28页
        1.4.3 疏水极性的影响第28-29页
        1.4.4 引入D-型氨基酸可提高多肽的稳定性第29页
    1.5 论文的主要研究内容第29-31页
第二章 抗肿瘤多肽的设计表征与生物物理性质测定第31-47页
    2.1 引言第31-32页
    2.2 实验部分第32-34页
        2.2.1 多肽的合成与表征第32页
        2.2.2 多肽二级结构测定第32-33页
        2.2.3 多肽自聚集实验第33页
        2.2.4 多肽标记铱金属配合物[Ir(ppy)_2(H_2O)_2](OTf)实验第33页
        2.2.5 多肽水-正辛醇分布实验第33-34页
    2.3 结果与讨论第34-46页
        2.3.1 多肽的设计第34-35页
        2.3.2 多肽的表征第35-42页
        2.3.3 多肽的生物物理性质测定第42-46页
    2.4 本章小结第46-47页
第三章 抗肿瘤多肽的生物活性及作用机制研究第47-72页
    3.1 引言第47-48页
    3.2 实验部分第48-53页
        3.2.1 实验试剂和药品第48页
        3.2.2 细胞培养第48-49页
        3.2.3 细胞存活率测定第49页
        3.2.4 多肽溶血性分析第49页
        3.2.5 HeLa-GFP荧光释放实验第49页
        3.2.6 PI,Hoechst染色实验第49-50页
        3.2.7 激光共聚焦成像实验第50页
        3.2.8 流式细胞凋亡检测实验第50页
        3.2.9 Caspase-3 活性检测和活性抑制实验第50-51页
        3.2.10 Caspase-8/9 活性检测实验第51页
        3.2.11 Western Blot检测实验第51-52页
        3.2.12 线粒体染色实验第52页
        3.2.13 细胞内活性氧(ROS)水平检测实验第52-53页
    3.3 统计学分析第53页
    3.4 结果与讨论第53-69页
        3.4.1 多肽对肿瘤细胞的毒性和选择性第53-56页
        3.4.2 多肽的膜裂解能力比较第56-58页
        3.4.3 RL1和RL2多肽不同的细胞互作行为第58-61页
        3.4.4 代谢压力导致RL2多肽引发肿瘤细胞凋亡第61-69页
    3.5 本章小结第69-72页
第四章 结论与展望第72-76页
    4.1 全文结论第72-73页
    4.2 研究展望第73-76页
参考文献第76-83页
作者在攻读硕士学位期间的科研成果第83-84页
致谢第84页

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