| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 1 绪论 | 第9-17页 |
| 1.1 问题的提出与研究意义 | 第9页 |
| 1.2 国内外研究现状 | 第9-15页 |
| 1.2.1 动脉粥样硬化的研究进展 | 第9-10页 |
| 1.2.2 血管内皮细胞在动脉粥样硬化发生、发展中的作用 | 第10-11页 |
| 1.2.3 Ox-LDL致动脉粥样硬化的研究进展 | 第11-13页 |
| 1.2.4 PKD2在维持血管结构完整和功能性调控中的作用 | 第13-15页 |
| 1.3 本文研究目的和研究内容 | 第15页 |
| 1.3.1 研究目的 | 第15页 |
| 1.3.2 主要研究内容 | 第15页 |
| 1.4 本文创新点 | 第15-16页 |
| 1.5 技术路线 | 第16-17页 |
| 2 Ox-LDL下调内皮细胞PKD2的表达和e NOS活性 | 第17-36页 |
| 2.1 引言 | 第17-18页 |
| 2.2 实验材料 | 第18-21页 |
| 2.2.1 主要仪器设备 | 第18页 |
| 2.2.2 实验试剂及药品 | 第18-20页 |
| 2.2.3 相关试剂的配制 | 第20-21页 |
| 2.3 相关实验方法 | 第21-30页 |
| 2.3.1 人脐静脉内皮细胞(HUVECs)的培养 | 第21-23页 |
| 2.3.2 实时定量PCR(RT-PCR)检测mRNA的表达水平 | 第23-26页 |
| 2.3.3 免疫荧光染色法检测蛋白表达水平 | 第26-27页 |
| 2.3.4 Western blot检测蛋白表达水平 | 第27-30页 |
| 2.4 实验结果 | 第30-34页 |
| 2.4.1 人脐静脉内皮细胞(HUVECs)的培养 | 第30-32页 |
| 2.4.2 Ox-LDL下调PKD2的表达 | 第32-33页 |
| 2.4.3 Ox-LDL下调eNOS的活性 | 第33-34页 |
| 2.5 讨论 | 第34-36页 |
| 3 PKD2调节AMPK-eNOS信号通路 | 第36-44页 |
| 3.1 引言 | 第36页 |
| 3.2 实验材料 | 第36-38页 |
| 3.2.1 主要仪器设备 | 第36-37页 |
| 3.2.2 实验试剂及药品 | 第37-38页 |
| 3.2.3 相关试剂的配制 | 第38页 |
| 3.3 相关实验方法 | 第38-39页 |
| 3.3.1 人脐静脉内皮细胞(HUVECs)的培养 | 第38-39页 |
| 3.3.2 实时定量PCR(RT-PCR)检测mRNA的表达水平 | 第39页 |
| 3.3.3 Western blot检测蛋白表达水平 | 第39页 |
| 3.4 实验结果 | 第39-42页 |
| 3.4.1 PKD2 siRNA下调PKD2的表达 | 第39-40页 |
| 3.4.2 PKD2下调eNOS的活性 | 第40页 |
| 3.4.3 PKD2介导AMPK途径下调eNOS的活性 | 第40-42页 |
| 3.5 讨论 | 第42-44页 |
| 4 体内外PKD2介导Ox-LDL抑制的内皮细胞eNOS活性 | 第44-54页 |
| 4.1 引言 | 第44-45页 |
| 4.2 实验材料 | 第45-47页 |
| 4.2.1 主要仪器设备 | 第45-46页 |
| 4.2.2 实验试剂及药品 | 第46-47页 |
| 4.2.3 相关试剂的配制 | 第47页 |
| 4.3 相关实验方法 | 第47-48页 |
| 4.3.1 人脐静脉内皮细胞(HUVECs)的培养 | 第47页 |
| 4.3.2 实时定量PCR(RT-PCR)检测mRNA的表达水平 | 第47-48页 |
| 4.3.3 Western blot检测蛋白表达水平 | 第48页 |
| 4.4 实验结果 | 第48-52页 |
| 4.4.1 在体外，Ox-LDL通过AMPK途径下调eNOS的活性 | 第48-50页 |
| 4.4.2 在体内，Ox-LDL下调PKD2的表达 | 第50-52页 |
| 4.5 讨论 | 第52-54页 |
| 5 结论与展望 | 第54-55页 |
| 5.1 本研究的主要结论 | 第54页 |
| 5.2 后期研究的展望 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-64页 |
| 附录 作者在攻读硕士学位期间参加的科研项目情况 | 第64页 |
