| 中英文缩略词表 | 第7-8页 |
| 摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 第1章 文献综述 | 第14-24页 |
| 1.1 碳点的结构、性质以及在生物医学领域的应用 | 第14-17页 |
| 1.1.1 碳点的结构与性质 | 第14-15页 |
| 1.1.2 碳点在生物医学领域的应用 | 第15-17页 |
| 1.2 碳点的生物安全性 | 第17-18页 |
| 1.2.1 发育毒性 | 第17页 |
| 1.2.2 生殖毒性 | 第17-18页 |
| 1.3 纳米材料的生物毒性机制 | 第18-19页 |
| 1.4 发育相关基因（Wnt8a、Mstn、Vezf1)的研究概况 | 第19-20页 |
| 1.5 维甲酸受体及ATP酶在早期发育中的功能研究 | 第20页 |
| 1.6 稀有鮈鲫的特点及优势 | 第20-21页 |
| 1.7 研究目的与意义 | 第21页 |
| 1.8 主要研究内容 | 第21-24页 |
| 第2章 CDs对稀有鮈鲫胚胎发育的毒性效应 | 第24-42页 |
| 2.1 实验材料与方法 | 第24-30页 |
| 2.1.1 实验试剂与仪器 | 第24-25页 |
| 2.1.2 受精卵获取 | 第25页 |
| 2.1.3 实验设计 | 第25-26页 |
| 2.1.4 显微观察与数据统计 | 第26页 |
| 2.1.5 抗氧化酶、Na~+/K~+-ATP酶、Ca~(2+)-ATP酶活性测定 | 第26页 |
| 2.1.6 胚胎/仔鱼细胞DNA损伤的测定 | 第26-27页 |
| 2.1.7 发育及氧化应激相关基因定量分析 | 第27-30页 |
| 2.2 结果 | 第30-38页 |
| 2.2.1 CDs对稀有鮈鲫胚胎发育毒性效应 | 第30-32页 |
| 2.2.2 Ca~(2+)-ATP酶和Na~+/K~+-ATP酶活性的影响 | 第32-33页 |
| 2.2.3 发育相关基因mRNA定量分析 | 第33-34页 |
| 2.2.4 CDs对稀有鮈鲫胚胎抗氧化酶活性和MDA含量的影响 | 第34-35页 |
| 2.2.5 氧化应激基因定量分析 | 第35-36页 |
| 2.2.6 DNA损伤分析 | 第36-37页 |
| 2.2.7 CDs在稀有鮈鲫体内累积及代谢 | 第37-38页 |
| 2.3 讨论 | 第38-41页 |
| 2.3.1 CDs对稀有鮈鲫早期发育的毒性效应 | 第38页 |
| 2.3.2 CDs暴露诱导发育缺陷的分子机制 | 第38-40页 |
| 2.3.3 氧化应激与DNA损伤 | 第40-41页 |
| 2.4 小结 | 第41-42页 |
| 第3章 CDs对稀有鮈鲫的生殖毒性 | 第42-54页 |
| 3.1 实验材料与方法 | 第42-44页 |
| 3.1.1 实验试剂与仪器 | 第42-43页 |
| 3.1.2 实验鱼来源及分组设计 | 第43页 |
| 3.1.3 子代早期发育的观察与测定 | 第43页 |
| 3.1.4 稀有鮈鲫精子活力有效运动时间的测定 | 第43页 |
| 3.1.5 稀有鮈鲫精子DNA损伤指标的测定 | 第43-44页 |
| 3.1.6 生殖腺指数的测定以及精巢、卵巢显微结构观察 | 第44页 |
| 3.1.7 数据处理 | 第44页 |
| 3.2 实验结果 | 第44-50页 |
| 3.2.1 CDs对稀有鮈鲫子代生长发育的影响 | 第44-45页 |
| 3.2.2 CDs稀有鮈鲫雌鱼产卵情况及卵径的影响 | 第45页 |
| 3.2.3 CDs对稀有鮈鲫精子活力的影响 | 第45-46页 |
| 3.2.4 CDs对稀有鮈鲫精子DNA的影响 | 第46-48页 |
| 3.2.5 CDs对稀有鮈鲫生殖腺指数及显微结构的影响 | 第48-50页 |
| 3.3 讨论 | 第50-52页 |
| 3.3.1 CDs对稀有鮈鲫的生殖毒性 | 第50-52页 |
| 3.4 结论 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-62页 |
| 附1章：维甲酸受体（RARα）的克隆 | 第62-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 发表论文和参加科研项目 | 第71页 |
