中文摘要 | 第3-4页 |
Abstract | 第4-5页 |
主要缩略词表 | 第6-10页 |
第一章 绪论 | 第10-29页 |
1.1 复杂样品的定义与特点 | 第10-12页 |
1.2 复杂样品的分离分析 | 第12-22页 |
1.2.1 色谱分离方法 | 第12-15页 |
1.2.2 分析鉴定技术 | 第15-19页 |
1.2.3 先进的算法和数据分析软件 | 第19-22页 |
1.3 毛细管电泳——质谱(CE-MS)联用技术 | 第22-26页 |
1.3.1 传统CE-MS联用技术简介 | 第23-25页 |
1.3.2 传统CE-MS联用技术中的样品预富集 | 第25-26页 |
1.4 本论文研究工作 | 第26-29页 |
1.4.1 新型CE-MS联用技术的设计思路 | 第27页 |
1.4.2 新型CE-MS联用技术的理论基础 | 第27-28页 |
1.4.3 CEkF与传统的CE的不同点 | 第28-29页 |
第二章 基于CEkF-MS联用技术的pKa测定半经验模型研究 | 第29-46页 |
摘要 | 第29页 |
2.1 引言 | 第29-30页 |
2.2 实验部分 | 第30-33页 |
2.2.1 试剂 | 第30-31页 |
2.2.2 仪器 | 第31页 |
2.2.3 缓冲液的配置 | 第31页 |
2.2.4 标准样品溶液的配制 | 第31-32页 |
2.2.5 质谱最优化条件 | 第32页 |
2.2.6 毛细管的预处理 | 第32页 |
2.2.7 CEkF操作模式 | 第32-33页 |
2.3 结果与讨论 | 第33-45页 |
2.3.1 半经验模型原理 | 第33-35页 |
2.3.2 模型有机酸的选取 | 第35页 |
2.3.3 半经验模型的建立 | 第35-36页 |
2.3.4 CEkF运行毛细管的选择 | 第36页 |
2.3.5 CEkF的参数优化 | 第36-38页 |
2.3.6 模型化合物MS响应与pH的关系 | 第38-40页 |
2.3.7 模型化合物pKa值的推算 | 第40-44页 |
2.3.8 待测物浓度的影响 | 第44-45页 |
2.4 总结 | 第45-46页 |
第三章 CEkF-FTICR/MS准在线联用技术结合pKa模型在葡萄酒中代谢物分析中的应用 | 第46-61页 |
摘要 | 第46页 |
3.1 引言 | 第46-48页 |
3.2 实验部分 | 第48-51页 |
3.2.1 仪器及软件 | 第48页 |
3.2.2 试剂 | 第48-49页 |
3.2.3 缓冲溶液的配置 | 第49页 |
3.2.4 葡萄酒样品的配置 | 第49页 |
3.2.5 PEEK毛细管的净化处理 | 第49页 |
3.2.6 CEkF分级提取葡萄酒样品流程 | 第49-50页 |
3.2.7 FTICR/MS检测分析 | 第50-51页 |
3.3 结果与讨论 | 第51-58页 |
3.3.1 CEkF的参数设定 | 第51-52页 |
3.3.2 葡萄酒CEkF片段的FTICR/MS分析 | 第52页 |
3.3.3 HCE分析 | 第52-53页 |
3.3.4 葡萄酒中代表性代谢物的例举 | 第53-57页 |
3.3.5 CEKF对葡萄酒中含硫化合物的提取 | 第57页 |
3.3.6 相同质量数的细节比较 | 第57-58页 |
3.4 总结 | 第58-61页 |
第四章 毛细管电动分级提取法准在线串联ICR-FT/MS分析重要水溶性有机化合物——有机磺酸酯 | 第61-78页 |
摘要 | 第61页 |
4.1 引言 | 第61-63页 |
4.2 实验部分 | 第63-66页 |
4.2.1 试剂 | 第63页 |
4.2.2 磺化Suwannee river天然有机质的制备 | 第63-64页 |
4.2.3 样品的采集及制备 | 第64-65页 |
4.2.4 PEEK毛细管的处理 | 第65页 |
4.2.5 ICR-FT/MS分析 | 第65页 |
4.2.6 CEkF操作流程 | 第65-66页 |
4.3 结果与讨论 | 第66-77页 |
4.3.1 生物燃烧质与PM2.5的ICR-FT/MS分析 | 第67-71页 |
4.3.2 生物燃烧质与PM2.5的van Krevelen diagrams | 第71-73页 |
4.3.3 有机磺酸酯的不稳定性 | 第73-77页 |
4.4 小结 | 第77-78页 |
第五章 CEkF准在线串联超高分辨率ICR-FT/MS及高场核磁共振技术:一种从分子层面表征NOM的新方法 | 第78-96页 |
摘要 | 第78页 |
5.1 引言 | 第78-80页 |
5.2 实验部分 | 第80-82页 |
5.2.1 试剂 | 第80页 |
5.2.2 PEEK毛细管的清洗 | 第80页 |
5.2.3 CEkF操作流程 | 第80-81页 |
5.2.4 FTICR-MS分析 | 第81-82页 |
5.2.5 NMR分析 | 第82页 |
5.3 结果与讨论 | 第82-95页 |
5.3.1 SRFA的CEkF分类提取 | 第82-83页 |
5.3.2 CEkF运行毛细管的选择 | 第83页 |
5.3.3 CEkF的条件优化 | 第83页 |
5.3.4 CEkF样品片段的采集与比较 | 第83-85页 |
5.3.5 ICR-FT/MS分析 | 第85-88页 |
5.3.6 van Krevelen diagrams分析 | 第88-91页 |
5.3.7 NMR分析 | 第91-95页 |
5.4 小结 | 第95-96页 |
第六章 CE-ESI-MS结合场放大富集技术用于微囊藻毒素以及尿样中的β_2-激动剂的分析 | 第96-112页 |
摘要 | 第96页 |
6.1 引言 | 第96-98页 |
6.2 实验部分 | 第98-101页 |
6.2.1 仪器与试剂 | 第98-99页 |
6.2.2 实验方法 | 第99-101页 |
6.3 结果与讨论 | 第101-111页 |
6.3.1 藻毒素CE-ESI-MS分离检测条件的优化 | 第101-106页 |
6.3.2 β_2-激动剂CE-ESI-MS分离检测条件的优化 | 第106-107页 |
6.3.3 线性范围、检测限与精密度 | 第107-109页 |
6.3.4 FASS结合CE-ESI-MS在实际样品测定中的应用 | 第109-111页 |
6.4 小结 | 第111-112页 |
第七章 高效液相色谱质谱联用技术在软骨藻酸稳定性研究中的应用 | 第112-123页 |
摘要 | 第112页 |
7.1 引言 | 第112-114页 |
7.2 实验试剂与实验仪器 | 第114-116页 |
7.2.1 实验试剂 | 第114页 |
7.2.2 实验仪器 | 第114-115页 |
7.2.3 标准溶液的配制 | 第115页 |
7.2.4 SPE流程 | 第115页 |
7.2.5 实际样品的制备 | 第115页 |
7.2.6 实验条件 | 第115-116页 |
7.3 结果与讨论 | 第116-122页 |
7.3.1 不同光照条件下DA的降解 | 第116-118页 |
7.3.2 DA的浓度对光降解率的影响 | 第118-120页 |
7.3.3 DA酸性条件下的光降解 | 第120页 |
7.3.4 标准工作曲线 | 第120-121页 |
7.3.5 实际样品检测 | 第121-122页 |
7.4 小结 | 第122-123页 |
全文总结与展望 | 第123-125页 |
参考文献 | 第125-132页 |
致谢 | 第132-133页 |
个人简历 | 第133-134页 |
在读期间发表的论文 | 第134页 |