| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 研究现状、成果 | 第11页 |
| 研究目的、方法 | 第11-13页 |
| 对象和方法 | 第13-19页 |
| 1 实验对象 | 第13-15页 |
| 1.1 组织来源及处理 | 第13页 |
| 1.2 主要试剂 | 第13-14页 |
| 1.3 主要设备及耗材 | 第14-15页 |
| 1.4 冷冻保护液的配备 | 第15页 |
| 1.5 卵巢组织及卵母细胞冷冻复苏液的配备 | 第15页 |
| 2 实验方法 | 第15-18页 |
| 2.1 未成熟卵母细胞成熟培养及玻璃化冻存 | 第15-16页 |
| 2.1.1 未成熟卵母细胞成熟培养 | 第15-16页 |
| 2.1.2 成熟卵母细胞玻璃化冻存 | 第16页 |
| 2.2 分组 | 第16页 |
| 2.3 方法 | 第16页 |
| 2.3.1 对照组 | 第16页 |
| 2.3.2 玻璃化冷冻组 | 第16页 |
| 2.3.3 复苏方法 | 第16页 |
| 2.4 人卵巢组织冷冻复苏效果判断 | 第16-18页 |
| 2.4.1 卵巢组织结构分析 | 第16页 |
| 2.4.2 卵母细胞成熟度判定 | 第16-17页 |
| 2.4.3 细胞增殖活性检测 | 第17-18页 |
| 2.4.4 细胞凋亡检测 | 第18页 |
| 3 统计学处理 | 第18-19页 |
| 结果 | 第19-24页 |
| 1 对照组与玻璃化冷冻组HE染色结果比较 | 第19-20页 |
| 2 对照组与玻璃化冷冻组免疫组化结果比较 | 第20-21页 |
| 3 对照组与玻璃化冷冻组Tunel细胞凋亡检测结果 | 第21-22页 |
| 4 玻璃化冻存卵母细胞数量 | 第22-24页 |
| 讨论 | 第24-30页 |
| 1 传统程序化冷冻方法和玻璃化冷冻 | 第24页 |
| 2 卵巢玻璃化冷冻的影响因素 | 第24-27页 |
| 2.1 玻璃化冷冻液配伍及浓度 | 第25-26页 |
| 2.2 CPA温度 | 第26页 |
| 2.3 逐步添加溶液 | 第26页 |
| 2.4 卵巢组织块大小 | 第26-27页 |
| 2.5 玻璃化冷冻载体 | 第27页 |
| 2.6 专业的技术 | 第27页 |
| 3 冻融后效果检测 | 第27-30页 |
| 3.1 卵巢组织结构分析 | 第27-28页 |
| 3.2 细胞增殖活性 | 第28页 |
| 3.3 细胞凋亡 | 第28页 |
| 3.4 未成熟卵母细胞成熟培养 | 第28-30页 |
| 结论 | 第30-31页 |
| 参考文献 | 第31-35页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第35-36页 |
| 综述 女性肿瘤患者生育力的保存 | 第36-46页 |
| 综述参考文献 | 第42-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |