| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 研究现状、成果 | 第11-12页 |
| 研究目的、方法 | 第12-13页 |
| 一、人牙龈干细胞体外培养及鉴定 | 第13-22页 |
| 1.1 对象和方法 | 第13-16页 |
| 1.1.1 实验仪器及设备 | 第13-14页 |
| 1.1.2 牙龈组织收集 | 第14页 |
| 1.1.3 人牙龈干细胞原代分离培养 | 第14-15页 |
| 1.1.4 倒置显微镜观察 | 第15页 |
| 1.1.5 流式细胞术检测牙龈干细胞表面抗原标志物 | 第15页 |
| 1.1.6 体外成骨诱导及检测 | 第15-16页 |
| 1.1.7 体外成脂诱导及染色 | 第16页 |
| 1.2 结果 | 第16-20页 |
| 1.2.1 显微镜下观察细胞的形态 | 第16-17页 |
| 1.2.2 流式细胞术检测GMSCs表达干细胞表面标志物 | 第17页 |
| 1.2.3 GMSCs经体外成骨诱导分化碱性磷酸酶染色阳性 | 第17-18页 |
| 1.2.4 GMSCs经体外成骨诱导分化碱性磷酸酶活性检测阳性 | 第18页 |
| 1.2.5 GMSCs体外成骨诱导分化具有矿化结节的能力 | 第18-19页 |
| 1.2.6 GMSCs体外成脂诱导后油红O染色呈阳性 | 第19-20页 |
| 1.3 讨论 | 第20-21页 |
| 1.4 小结 | 第21-22页 |
| 二、曲古抑菌素A对炎症环境下牙龈干细胞中炎性细胞因子的抑制作用 | 第22-36页 |
| 2.1 对象和方法 | 第22-27页 |
| 2.1.1 主要的实验设备 | 第22页 |
| 2.1.2 半定量RT-PCR检测HDACⅠ、Ⅲ、Ⅳ及炎症因子的表达 | 第22-24页 |
| 2.1.3 MTT法检测不同浓度TSA对GMSCs的增殖影响 | 第24页 |
| 2.1.4 流式细胞术Annexin V检测不同浓度TSA对GMSCs凋亡影响 | 第24-25页 |
| 2.1.5 半定量RT-PCR检测TSA在炎症微环境下对GMSCs炎性因子的作用 | 第25页 |
| 2.1.6 流式细胞术CBA法检测TSA在炎症微环境下对GMSC炎性因子的作用 | 第25-27页 |
| 2.2 结果 | 第27-33页 |
| 2.2.1 HDACⅠ、Ⅲ、Ⅳ与炎症因子IL-6、IL-8 在N-GMSC和I-GMSC中表达有差异 | 第27-28页 |
| 2.2.2 MTT检测 100 nM的TSA对GMSC增殖的影响 | 第28-29页 |
| 2.2.3 流式细胞术Annexin V检测 100 nM的TSA对GMSC凋亡的影响 | 第29页 |
| 2.2.4 半定量RT-PCR检测TSA抑制炎性微环境下GMSC中IL-6、IL-8mRNA的表达 | 第29-31页 |
| 2.2.5 流式细胞术CBA法检测TSA抑制炎症微环境下GMSC中炎症因子的表达 | 第31-33页 |
| 2.3 讨论 | 第33-34页 |
| 2.4 小结 | 第34-36页 |
| 三、曲古抑菌素A调节炎性细胞因子的分子机制 | 第36-45页 |
| 3.1 对象和方法 | 第36-41页 |
| 3.1.0 主要的实验试剂及设备 | 第36页 |
| 3.1.1 NF-κB(p65) DNA结合活性检测TSA对炎症环境下GMSC中p65的转录活性的作用 | 第36-39页 |
| 3.1.2 免疫荧光显微镜检测TSA对炎症环境下p65的转录活性 | 第39-41页 |
| 3.2 结果 | 第41-43页 |
| 3.2.1 TSA抑制炎症环境下GMSC中p65入核的转录活性 | 第41-42页 |
| 3.2.2 TSA抑制炎症环境下GNSC中p65和I-κB磷酸化 | 第42-43页 |
| 3.3 讨论 | 第43-44页 |
| 3.4 小结 | 第44-45页 |
| 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-50页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第50-52页 |
| 综述 组蛋白去乙酰化酶及抑制剂对慢性炎症性疾病中作用的研究进展 | 第52-60页 |
| 综述参考文献 | 第56-60页 |
| 致谢 | 第60页 |
