| 缩略词一览表 | 第10-12页 |
| 中文摘要 | 第12-14页 |
| Abstract | 第14-15页 |
| 第一章 文献综述和选题依据 | 第16-34页 |
| 1.1 杏鲍菇概述 | 第16-18页 |
| 1.1.1 杏鲍菇的营养价值 | 第16-17页 |
| 1.1.2 杏鲍菇的生物活性 | 第17-18页 |
| 1.2 杏鲍菇多糖的研究进展 | 第18-22页 |
| 1.2.1 杏鲍菇多糖的提取分离 | 第18-20页 |
| 1.2.1.1 传统提取法 | 第18-19页 |
| 1.2.1.2 酶法提取 | 第19页 |
| 1.2.1.3 超声波辅助提取 | 第19-20页 |
| 1.2.1.4 微波辅助提取 | 第20页 |
| 1.2.2 杏鲍菇多糖的生物活性 | 第20-22页 |
| 1.2.2.1 抗氧化 | 第20-21页 |
| 1.2.2.2 增强免疫力 | 第21-22页 |
| 1.2.2.3 降血脂 | 第22页 |
| 1.2.2.4 抗肿瘤 | 第22页 |
| 1.2.2.5 抗疲劳 | 第22页 |
| 1.2.2.6 抑制血管再生 | 第22页 |
| 1.3 β-葡聚糖的研究进展 | 第22-32页 |
| 1.3.1 β-葡聚糖的命名 | 第23页 |
| 1.3.2 β-葡聚糖的自然来源 | 第23页 |
| 1.3.3 β-葡聚糖化学 | 第23-24页 |
| 1.3.4 β-葡聚糖的生物活性 | 第24-28页 |
| 1.3.4.1 增强免疫力 | 第24-25页 |
| 1.3.4.2 减肥降脂 | 第25-26页 |
| 1.3.4.3 降血糖 | 第26页 |
| 1.3.4.4 抗肿瘤 | 第26-27页 |
| 1.3.4.5 抗氧化 | 第27页 |
| 1.3.4.6 抗炎 | 第27-28页 |
| 1.3.4.7 抗疲劳 | 第28页 |
| 1.3.5 β-葡聚糖的吸收 | 第28-29页 |
| 1.3.6 β-葡聚糖的生物活性与结构的关系 | 第29-30页 |
| 1.3.6.1 分支度与活性的关系 | 第29-30页 |
| 1.3.6.2 分子量与活性的关系 | 第30页 |
| 1.3.6.3 连接方式及特定基团与活性的关系 | 第30页 |
| 1.3.7 β-葡聚糖的食用安全性 | 第30-32页 |
| 1.4 本研究的选题依据及主要内容 | 第32-34页 |
| 1.4.1 研究的选题依据 | 第32-33页 |
| 1.4.2 主要研究内容 | 第33-34页 |
| 第二章 杏鲍菇胞壁β-葡聚糖的提取、分离纯化、理化性质和结构分析 | 第34-52页 |
| 2.1 实验仪器、试剂和材料 | 第35-36页 |
| 2.1.1 实验仪器 | 第35-36页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第36页 |
| 2.1.3 试验材料 | 第36页 |
| 2.2 实验方法 | 第36-41页 |
| 2.2.1 多糖含量测定 | 第36-37页 |
| 2.2.1.1 标准曲线的绘制 | 第36-37页 |
| 2.2.1.2 样品多糖含量的测定 | 第37页 |
| 2.2.2 离子交换柱层析 | 第37页 |
| 2.2.2.1 材料预处理 | 第37页 |
| 2.2.2.2 离子交换柱层析 | 第37页 |
| 2.2.3 凝胶柱层析 | 第37-38页 |
| 2.2.4 理化性质测定 | 第38页 |
| 2.2.4.1 多糖的性状 | 第38页 |
| 2.2.4.2 pH值测定 | 第38页 |
| 2.2.4.3 粘度的测定 | 第38页 |
| 2.2.5 纯度测定 | 第38-39页 |
| 2.2.5.1 比旋度法 | 第38-39页 |
| 2.2.5.2 HPLC法 | 第39页 |
| 2.2.6 旋光度测定 | 第39页 |
| 2.2.7 分子量测定 | 第39页 |
| 2.2.8 单糖组成分析 | 第39-40页 |
| 2.2.8.1 样品的制备及糖腈乙酰化 | 第39-40页 |
| 2.2.8.2 气相色谱分析条件 | 第40页 |
| 2.2.9 紫外光谱分析 | 第40页 |
| 2.2.10 红外光谱分析 | 第40页 |
| 2.2.11 糖苷键分析 | 第40-41页 |
| 2.2.11.1 高碘酸氧化 | 第40-41页 |
| 2.2.11.2 Smith降解 | 第41页 |
| 2.3 结果与分析 | 第41-48页 |
| 2.3.1 杏鲍菇胞壁β-葡聚糖的提取 | 第41-42页 |
| 2.3.2 杏鲍菇胞壁β-葡聚糖的分离纯化 | 第42-44页 |
| 2.3.3 PEWP的理化特性 | 第44-45页 |
| 2.3.4 PEWP的纯度鉴定 | 第45页 |
| 2.3.4.1 比旋度法 | 第45页 |
| 2.3.4.2 HPLC法 | 第45页 |
| 2.3.5 PEWP分子量的测定 | 第45页 |
| 2.3.6 PEWP的单糖组成分析 | 第45-46页 |
| 2.3.7 PEWP的紫外-可见光谱分析 | 第46-47页 |
| 2.3.8 PEWP糖链结构分析 | 第47-48页 |
| 2.3.8.1 PEWP糖苷键键型分析 | 第47页 |
| 2.3.8.2 PEWP糖苷键连接方式分析 | 第47-48页 |
| 2.4 讨论 | 第48-51页 |
| 2.5 小结 | 第51-52页 |
| 第三章 杏鲍菇胞壁β-葡聚糖促人胃粘膜上皮细胞增殖和迁移效果研究 | 第52-60页 |
| 3.1 实验仪器、试剂和材料 | 第52-53页 |
| 3.1.1 实验仪器 | 第52-53页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第53页 |
| 3.1.3 试验材料 | 第53页 |
| 3.2 实验方法 | 第53-54页 |
| 3.2.1 多糖溶液制备 | 第53页 |
| 3.2.2 细胞培养 | 第53页 |
| 3.2.3 PEWP对人胃粘膜上皮细胞GES-1增殖的影响 | 第53-54页 |
| 3.2.4 PEWP对人胃粘膜上皮细胞GES-1迁移的影响 | 第54页 |
| 3.2.5 数据处理 | 第54页 |
| 3.3 结果与分析 | 第54-59页 |
| 3.3.1 PEWP对GES-1细胞增殖的影响 | 第54-57页 |
| 3.3.2 PEWP对GES-1细胞迁移的影响 | 第57-59页 |
| 3.4 讨论 | 第59页 |
| 3.5 小结 | 第59-60页 |
| 第四章 杏鲍菇胞壁β-葡聚糖对大鼠高脂膳食诱导肥胖及高脂血症的预防作用研究 | 第60-83页 |
| 4.1 实验仪器、试剂和材料 | 第61-62页 |
| 4.1.1 实验仪器 | 第61页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第61页 |
| 4.1.3 试验材料 | 第61-62页 |
| 4.2 实验方法 | 第62-66页 |
| 4.2.1 动物饲养及造模 | 第62-63页 |
| 4.2.2 动物取样 | 第63-64页 |
| 4.2.3 血脂测定 | 第64页 |
| 4.2.4 肝脏中抗氧化水平测定 | 第64-66页 |
| 4.2.4.1 SOD活性的测定 | 第64-65页 |
| 4.2.4.2 丙二醛(MDA)含量的测定 | 第65页 |
| 4.2.4.3 蛋白质含量测定 | 第65-66页 |
| 4.2.5 组织病理学 | 第66页 |
| 4.2.6 数据处理 | 第66页 |
| 4.3 结果与分析 | 第66-80页 |
| 4.3.1 PEWP对大鼠体重、增重和摄食量的影响 | 第67-68页 |
| 4.3.2 PEWP对大鼠体内脂肪和脂肪系数的影响 | 第68-70页 |
| 4.3.3 PEWP对大鼠各脏器指数的影响 | 第70-71页 |
| 4.3.4 PEWP对大鼠血脂、肝功能及动脉粥样硬化指数的影响 | 第71-74页 |
| 4.3.4.1 PEWP对大鼠血清脂质水平及动脉粥样硬化指数的影响 | 第71-73页 |
| 4.3.4.2 PEWP对大鼠肝功能的影响 | 第73-74页 |
| 4.3.5 PEWP对大鼠肝脏及心脏主动脉组织病理学的影响 | 第74-79页 |
| 4.3.5.1 肝脏解剖观察 | 第74-76页 |
| 4.3.5.2 肝脏病理学观察 | 第76-77页 |
| 4.3.5.3 心脏主动脉病理学观察 | 第77-79页 |
| 4.3.6 PEWP对大鼠肝脏抗氧化水平的影响 | 第79-80页 |
| 4.4 讨论 | 第80-82页 |
| 4.5 小结 | 第82-83页 |
| 第五章 杏鲍菇胞壁β-葡聚糖对高脂膳食诱导大鼠肥胖及高脂血症的治疗作用研究 | 第83-103页 |
| 5.1 实验仪器、试剂和材料 | 第83-84页 |
| 5.1.1 实验仪器 | 第83-84页 |
| 5.1.2 实验试剂 | 第84页 |
| 5.1.3 试验材料 | 第84页 |
| 5.2 实验方法 | 第84-87页 |
| 5.2.1 动物饲养及造模 | 第84-85页 |
| 5.2.2 动物取样 | 第85页 |
| 5.2.3 血脂测定 | 第85-86页 |
| 5.2.4 肝脏中抗氧化水平测定 | 第86页 |
| 5.2.5 肝脏中脂蛋白脂酶(LPL)和肝脂酶(HL)活性测定 | 第86-87页 |
| 5.2.6 组织病理学 | 第87页 |
| 5.2.7 数据处理 | 第87页 |
| 5.3 结果与分析 | 第87-101页 |
| 5.3.1 高脂饲料对大鼠造模结果分析 | 第87-88页 |
| 5.3.2 PEWP对大鼠体重、增重和摄食量的影响 | 第88-89页 |
| 5.3.3 PEWP对大鼠体脂、脂肪系数的影响 | 第89-90页 |
| 5.3.4 PEWP对大鼠各脏器指数的影响 | 第90-92页 |
| 5.3.5 PEWP对大鼠血脂、肝功能及动脉粥样硬化指数的影响 | 第92-94页 |
| 5.3.5.1 PEWP对大鼠血清脂质水平及动脉粥样硬化指数的影响 | 第92-93页 |
| 5.3.5.2 PEWP对大鼠肝功能的影响 | 第93-94页 |
| 5.3.6 PEWP对大鼠肝脏及心脏主动脉组织病理学的影响 | 第94-98页 |
| 5.3.6.1 肝脏解剖观察 | 第94-95页 |
| 5.3.6.2 肝脏病理学观察 | 第95-97页 |
| 5.3.6.3 心脏主动脉病理学观察 | 第97-98页 |
| 5.3.7 PEWP对大鼠肝脏抗氧化水平的影响 | 第98-100页 |
| 5.3.8 PEWP对肝脏中肝脂酶和脂蛋白脂酶活性的影响 | 第100-101页 |
| 5.4 讨论 | 第101-102页 |
| 5.5 小结 | 第102-103页 |
| 第六章 杏鲍菇胞壁β-葡聚糖对小肠α-葡萄糖苷酶的抑制作用研究 | 第103-108页 |
| 6.1 实验仪器、试剂和材料 | 第104页 |
| 6.1.1 实验仪器 | 第104页 |
| 6.1.2 实验试剂 | 第104页 |
| 6.1.3 试验材料 | 第104页 |
| 6.2 实验方法 | 第104-106页 |
| 6.2.1 杏鲍菇多糖的制备 | 第104-105页 |
| 6.2.1.1 杏鲍菇胞外多糖(PEP)制备 | 第104页 |
| 6.2.1.2 杏鲍菇胞壁β-葡聚糖(PEWP)的制备 | 第104-105页 |
| 6.2.2 兔子离体小肠α-葡萄糖苷酶的制备 | 第105页 |
| 6.2.3 多糖及拜糖平对兔子离体小肠α-葡萄糖苷酶活性抑制效果的测定 | 第105页 |
| 6.2.4 α-葡萄糖苷酶活性抑制结果的计算 | 第105页 |
| 6.2.5 数据处理 | 第105-106页 |
| 6.3 结果与分析 | 第106-107页 |
| 6.4 讨论 | 第107页 |
| 6.5 小结 | 第107-108页 |
| 第七章 全文总结与展望 | 第108-111页 |
| 7.1 主要结论 | 第108-109页 |
| 7.2 主要创新点 | 第109-110页 |
| 7.3 展望 | 第110-111页 |
| 参考文献 | 第111-122页 |
| 致谢 | 第122-123页 |
| 攻读博士学位期间发表的的论文 | 第123页 |
