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红笛鲷清道夫受体B型Ⅰ类和抗冻蛋白Ⅱ型基因的克隆、表达与定量分析

摘要第1-8页
Abstract第8-13页
1 前言第13-18页
   ·清道夫受体B 型Ⅰ类(Scavenger Receptor class B typeⅠ,SR-BⅠ)的研究进展第13-14页
     ·SR-BⅠ的发现和组织分布第13页
     ·SR-BⅠ的生物学功能第13-14页
   ·抗冻蛋白与动物抗寒机制第14-16页
     ·抗冻蛋白简介第14-15页
     ·鱼类抗冻蛋白分类及其特性第15-16页
     ·鱼类抗冻蛋白在水产行业和生物工程的应用前景第16页
   ·研究的目的、意义第16-18页
     ·研究目的第16-17页
     ·研究意义第17-18页
2 红笛鲷清道夫受体B 型Ⅰ类全长基因的克隆第18-31页
   ·实验材料第18-19页
     ·实验对象第18页
     ·实验菌株和载体第18页
     ·主要试剂第18页
     ·主要溶液和试剂的配制第18页
     ·主要实验仪器第18-19页
   ·实验方法第19-25页
     ·RNA 的提取第19页
     ·红笛鲷SR-BⅠ的RACE 克隆第19-25页
   ·结果与分析第25-29页
     ·红笛鲷部分组织总RNA 的提取第25页
     ·cDNA 一链的合成第25-26页
     ·红笛鲷SR-BⅠ基因的3’端及5’端片段的电泳结果第26页
     ·红笛鲷SR-BⅠ基因序列分析第26-27页
     ·红笛鲷SR-BⅠ基因的同源性分析及系统树的构建第27-29页
   ·讨论第29-31页
3 SR-BⅠ基因在红笛鲷表达差异研究第31-38页
   ·实验仪器第31页
   ·实验方法第31-33页
     ·溶藻弧菌的培养第31页
     ·红笛鲷的暂养及样品采集第31页
     ·Transzol 提取RNA 及cDNA 一链合成第31页
     ·SR-BⅠ基因在红笛鲷不同组织中的表达情况第31-32页
     ·SR-BⅠ基因在红笛鲷不同组织中的表达情况第32-33页
   ·结果与分析第33-36页
     ·红笛鲷SR-BⅠ基因在各个组织的时间表达差异第33-36页
   ·讨论第36-38页
4 红笛鲷抗冻蛋白Ⅱ型全长基因的克隆第38-43页
   ·实验材料第38页
   ·实验方法第38-39页
     ·RNA 的提取第38页
     ·红笛鲷AFPⅡ的RACE 克隆第38-39页
   ·结果与分析第39-41页
     ·红笛鲷AFPⅡ基因的3’端及5’端片段的电泳结果第39页
     ·核苷酸序列分析第39-41页
   ·讨论第41-43页
5 红笛鲷AFPⅡ基因的原核表达第43-50页
   ·实验材料第43-44页
     ·载体和菌株第43页
     ·主要试剂第43页
     ·蛋白电泳所用溶液第43页
     ·仪器第43-44页
   ·实验方法第44-46页
     ·引物的设计第44页
     ·红笛鲷AFPⅡ基因的ORF 扩增第44页
     ·提取质粒DNA第44-45页
     ·PCR 产物酶切及质粒的酶切消化第45页
     ·连接第45-46页
     ·连接产物转入DH5α并筛选阳性克隆第46页
     ·重组质粒转入表达菌BL21第46页
     ·重组融合蛋白的诱导表达第46页
   ·结果与分析第46-48页
     ·AFPⅡ基因的合成及表达载体的构建第46-47页
     ·重组红笛鲷AFPⅡ基因在大肠杆菌中的表达情况分析第47-48页
   ·讨论第48-50页
6 AFPⅡ基因在红笛鲷表达差异研究第50-52页
   ·实验仪器第50页
   ·实验方法第50页
     ·红笛鲷的暂养及样品采集第50页
     ·Transzol 法提取总RNA 及cDNA 一链合成第50页
   ·结果与分析第50-51页
     ·红笛鲷AFPⅡ基因在不同组织的差异表达第50-51页
   ·讨论第51-52页
7 结论第52-53页
   ·红笛鲷SR-BⅠ基因的克隆第52页
   ·红笛鲷SR-BⅠ基因差异表达分析第52页
   ·红笛鲷AFPⅡ基因的克隆第52页
   ·红笛鲷AFPⅡ基因原核表达载体的构建第52页
   ·红笛鲷AFPⅡ基因差异表达分析第52-53页
参考文献第53-57页
致谢第57-58页
作者简历第58-59页
导师简介第59页

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