| 摘要 | 第4-7页 |
| ABSTRACT | 第7-11页 |
| 第一章 前言 | 第15-29页 |
| 1.1 废用性肌肉萎缩的研究现状 | 第15-24页 |
| 1.1.1 废用状态下骨骼肌形态学和功能的变化 | 第15-17页 |
| 1.1.2 废用性肌肉萎缩的检测方法 | 第17页 |
| 1.1.3 废用性肌萎缩的动物模型 | 第17页 |
| 1.1.4 废用性肌萎缩的分子机制 | 第17-24页 |
| 1.1.5 废用性肌萎缩的防治 | 第24页 |
| 1.2 冬眠动物抗废用性肌萎缩的研究进展 | 第24-27页 |
| 1.2.1 冬眠对骨骼肌形态和功能影响 | 第25-26页 |
| 1.2.2 冬眠对骨骼肌蛋白质合成和降解的影响 | 第26页 |
| 1.2.3 冬眠对骨骼肌纤维胞浆Ca~+浓度的影响 | 第26-27页 |
| 1.3 本研究的目的和意义 | 第27-29页 |
| 第二章 冬眠不同时期达乌尔黄鼠比目鱼肌和趾长伸肌中MuRF1 mRNA的表达变化 | 第29-45页 |
| 2.1 前言 | 第29-30页 |
| 2.2 材料与方法 | 第30-35页 |
| 2.2.1 实验动物及分组 | 第30-31页 |
| 2.2.2 实验动物的取样 | 第31页 |
| 2.2.3 主要仪器和试剂 | 第31-32页 |
| 2.2.4 总RNA的提取 | 第32-34页 |
| 2.2.5 实时定量PCR | 第34-35页 |
| 2.3 实验结果 | 第35-41页 |
| 2.3.1 冬眠不同时期达乌尔黄鼠比目鱼肌和趾长伸肌肌重体重比的变化 | 第35-38页 |
| 2.3.2 冬眠不同时期达乌尔黄鼠比目鱼肌MuRF1 mRNA的表达变化 | 第38-40页 |
| 2.3.3 冬眠不同时期达乌尔黄鼠趾长伸肌MuRF1 mRNA的表达变化 | 第40-41页 |
| 2.4 讨论 | 第41-45页 |
| 2.4.1 冬眠不同时期骨骼肌肌肉重量和肌重体重比的变化 | 第41-42页 |
| 2.4.2 冬眠不同时期骨骼肌中MuRF1 mRNA的表达变化 | 第42-45页 |
| 第三章 冬眠不同时期达乌尔黄鼠比目鱼肌和趾长伸肌中IKK β和p50 mRNA的表达变化 | 第45-53页 |
| 3.1 前言 | 第45-46页 |
| 3.2 材料与方法 | 第46页 |
| 3.3 实验结果 | 第46-50页 |
| 3.3.1 引物特异性及退火温度的检测 | 第46页 |
| 3.3.2 实时定量PCR结果鉴定 | 第46-47页 |
| 3.3.3 冬眠不同时期黄鼠比目鱼肌和趾长伸肌中IKKβ和p50 mRNA表达的变化 | 第47-50页 |
| 3.4 讨论 | 第50-53页 |
| 第四章 冬眠不同时期达乌尔黄鼠比目鱼肌和趾长伸肌中IKKβ/p50/MuRF1蛋白表达的变化 | 第53-65页 |
| 4.1 前言 | 第53页 |
| 4.2 材料与方法 | 第53-58页 |
| 4.2.1 实验动物及分组 | 第53页 |
| 4.2.2 实验动物取样 | 第53页 |
| 4.2.3 主要仪器及试剂 | 第53-55页 |
| 4.2.4 Western blot实验步骤 | 第55-58页 |
| 4.2.5 实验数据统计与分析 | 第58页 |
| 4.3 实验结果 | 第58-62页 |
| 4.3.1 冬眠不同时期达乌尔黄鼠趾长伸肌中p50和MuRF1蛋白水平的表达变化 | 第58-60页 |
| 4.3.2 冬眠不同时期达乌尔黄鼠比目鱼肌中p50和MuRF1蛋白水平的表达变化 | 第60-62页 |
| 4.4 讨论 | 第62-65页 |
| 结论与创新点 | 第65-67页 |
| 不足与展望 | 第67-69页 |
| 参考文献 | 第69-76页 |
| 攻读硕士学位期间取得的学术成果 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77页 |
