| 缩略词表 | 第1-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-13页 |
| 1、文献综述 | 第13-32页 |
| ·钙敏感受体 | 第13-18页 |
| ·CaSR在体内的分布 | 第13-14页 |
| ·CaSR的激动剂 | 第14-15页 |
| ·CaSR的生理作用 | 第15-16页 |
| ·CaSR介导的细胞内信号传导通路 | 第16页 |
| ·CaSR蛋白的表达形式 | 第16-17页 |
| ·CaSR与动脉粥样硬化的关系 | 第17-18页 |
| ·硫化氢 | 第18-32页 |
| ·H2S的生成与代谢 | 第18-22页 |
| ·H2S的生理功能 | 第22-26页 |
| ·H2S与糖尿病 | 第26-28页 |
| ·H2S与动脉粥样硬化 | 第28-32页 |
| 2、前言 | 第32-33页 |
| 3、材料与方法 | 第33-44页 |
| ·技术路线 | 第33-34页 |
| ·试剂与仪器 | 第34-36页 |
| ·实验方法 | 第36-44页 |
| ·动物模型建立与分组 | 第36-37页 |
| ·血糖测定 | 第37页 |
| ·透射电镜检测肠系膜动脉超微结构 | 第37-38页 |
| ·HE染色 | 第38页 |
| ·Masson染色 | 第38-39页 |
| ·肠系膜二级动脉血管环舒张率变化测定 | 第39页 |
| ·Western blotting检测组织/细胞蛋白表达 | 第39-40页 |
| ·紫外分光光度法检测内源性H2S浓度 | 第40-41页 |
| ·激光共聚焦显微镜检测细胞内钙变化 | 第41-42页 |
| ·免疫荧光 | 第42页 |
| ·噻唑蓝比色法（MTT）检测细胞的生存率 | 第42页 |
| ·流式细胞仪检测细胞增殖 | 第42-43页 |
| ·统计学处理 | 第43-44页 |
| 4、结果 | 第44-67页 |
| ·大鼠肠系膜动脉病理改变及相关蛋白表达的动态变化 | 第44-55页 |
| ·大鼠一般状态及随机血糖测定 | 第44页 |
| ·肠系膜动脉超微结构的变化 | 第44-46页 |
| ·HE染色 | 第46页 |
| ·Masson染色 | 第46-47页 |
| ·60 μM NaHS对糖尿病大鼠肠系膜动脉血管环舒张率变化的影响 | 第47-48页 |
| ·5 μM Calindol对糖尿病大鼠肠系膜动脉血管环舒张率变化的影响 | 第48-50页 |
| ·300 μM GdCl3对糖尿病大鼠肠系膜动脉血管环舒张率变化的影响 | 第50页 |
| ·4w糖尿病大鼠肠系膜动脉CaSR、CSE及Cyclin D1表达的变化 | 第50-51页 |
| ·8w糖尿病大鼠肠系膜动脉CaSR、CSE及Cyclin D1表达的变化 | 第51-52页 |
| ·12w糖尿病大鼠肠系膜动脉CaSR、CSE及Cyclin D1表达的变化 | 第52-53页 |
| ·NaHS对糖尿病大鼠肠系膜动脉HB-EGF表达的影响 | 第53-55页 |
| ·NaHS对高糖培养大鼠胸主动脉平滑肌细胞（A7r5）的作用 | 第55-67页 |
| ·激光共聚焦检测不同处理因素对培养A7r5 [Ca2+]i的影响 | 第55-57页 |
| ·不同处理因素对高糖培养A7r5 CaSR和CSE蛋白表达的影响 | 第57-61页 |
| ·紫外分光光度法检测CaSR激动剂对A7r5内源性H2S浓度的影响 | 第61-63页 |
| ·免疫荧光检测不同处理因素对高糖培养A7r5 PCNA表达的影响 | 第63-64页 |
| ·免疫荧光检测不同处理因素对高糖培养A7r5 p21表达的影响 | 第64页 |
| ·MTT检测不同处理因素对A7r5生存率的影响 | 第64-65页 |
| ·流式细胞仪检测不同处理因素对A7r5增殖情况的影响 | 第65-66页 |
| ·Western blotting检测不同处理因素对A7r5 ERK通路的影响 | 第66-67页 |
| 5、讨论 | 第67-75页 |
| 6、结论 | 第75-76页 |
| 7、致谢 | 第76-77页 |
| 8、参考文献 | 第77-94页 |
| 9、个人简历 | 第94-95页 |
