| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 第1章 引言 | 第11-21页 |
| ·硬骨鱼类简介及本研究目的与意义 | 第11页 |
| ·剂量补偿和 MSL 复合物研究进展 | 第11-19页 |
| ·剂量补偿 | 第12页 |
| ·果蝇 MSL 复合物 | 第12-16页 |
| ·果蝇 MSL 的剂量补偿机制 | 第16-17页 |
| ·MSL 在人和硬骨鱼类的研究进展 | 第17-19页 |
| ·主要研究内容和技术路线 | 第19-21页 |
| 第2章 材料与方法 | 第21-33页 |
| ·材料 | 第21-24页 |
| ·实验动物 | 第21页 |
| ·主要试剂 | 第21页 |
| ·引物 | 第21-24页 |
| ·实验方法 | 第24-33页 |
| ·总 RNA 的提取（RDP 法）和去除 DNA 的污染 | 第24页 |
| ·合成 Lc-msl2 RT-PCR cDNA 第一链和 PCR 扩增获取基因片段 | 第24页 |
| ·SMART-RACE 技术获取基因全长 | 第24-26页 |
| ·割胶纯化基因片段 | 第26页 |
| ·与质粒载体连接 | 第26页 |
| ·感受态细胞的转化及筛选 | 第26页 |
| ·质粒插入片段的检测 | 第26-27页 |
| ·质粒测序 | 第27页 |
| ·目的基因的生物信息学分析 | 第27页 |
| ·实时荧光定量 PCR 反应体系及条件 | 第27-28页 |
| ·原位杂交实验 | 第28-31页 |
| ·斑马鱼胚胎显微注射 | 第31-33页 |
| 第3章 结果 | 第33-70页 |
| ·总 RNA 的抽提结果 | 第33页 |
| ·RT-PCR 扩增结果 | 第33-34页 |
| ·RACE-PCR 扩增结果 | 第34页 |
| ·基因序列分析 | 第34-59页 |
| ·Lc-msl1 基因序列分析 | 第34-43页 |
| ·Lc-msl2 基因序列分析 | 第43-51页 |
| ·Lc-msl3 基因序列分析 | 第51-59页 |
| ·各基因在大黄鱼不同组织器官中的表达情况 | 第59-62页 |
| ·Lc-msl1 在雌雄各组织器官中的表达 | 第60页 |
| ·Lc-msl2 在雌雄各组织器官中的表达 | 第60-61页 |
| ·Lc-msl3 在雌雄各组织器官中的表达 | 第61-62页 |
| ·各基因在大黄鱼胚胎发育不同时期的表达情况 | 第62-64页 |
| ·Lc-msl1 在胚胎发育不同时期的表达 | 第62页 |
| ·Lc-msl2 在胚胎发育不同时期的表达 | 第62-63页 |
| ·Lc-msl3 在胚胎发育不同时期的表达 | 第63-64页 |
| ·斑马鱼 msl1 基因在胚胎发育不同时期的表达和定位 | 第64-66页 |
| ·斑马鱼 msl1 基因在胚胎发育不同时期的表达 | 第64页 |
| ·斑马鱼 msl1 基因在胚胎发育不同时期的定位研究 | 第64-66页 |
| ·RNAi 敲降斑马鱼 msl1 基因 | 第66-70页 |
| ·有效 siRNA 靶位点的筛选 | 第66页 |
| ·siRNA 敲降斑马鱼 msl1 基因的表达 | 第66-70页 |
| 第4章 讨论 | 第70-75页 |
| ·Lc-msl1 基因 | 第70-72页 |
| ·Lc-msl2 基因 | 第72-74页 |
| ·Lc-msl3 基因 | 第74-75页 |
| 第5章 结论与展望 | 第75-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-83页 |
| 在学期间发表的学术论文 | 第83页 |
