| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-15页 |
| 引言 | 第15-17页 |
| 第1章 文献综述 | 第17-31页 |
| ·壳聚糖简介 | 第17-19页 |
| ·壳寡糖的研究进展 | 第19-24页 |
| ·壳寡糖简介 | 第19页 |
| ·壳寡糖的制备方法 | 第19-22页 |
| ·壳寡糖的生物功能 | 第22-24页 |
| ·细胞凋亡及其作用机制 | 第24-27页 |
| ·Bcl-2 家族与细胞凋亡 | 第24-26页 |
| ·Survivin 与细胞凋亡 | 第26-27页 |
| ·细胞自噬及其作用机制 | 第27-29页 |
| ·本研究的前期工作 | 第29-31页 |
| 第2章 壳寡糖抑制 HELA 细胞、A549 细胞增殖 | 第31-38页 |
| ·实验材料 | 第31-32页 |
| ·仪器 | 第31页 |
| ·试剂和细胞株 | 第31-32页 |
| ·方法 | 第32-33页 |
| ·壳寡糖的制备 | 第32页 |
| ·细胞培养 | 第32-33页 |
| ·MTT 法检测细胞增殖抑制率 | 第33页 |
| ·壳寡糖对细胞形态的影响 | 第33页 |
| ·统计学分析 | 第33页 |
| ·结果 | 第33-36页 |
| ·壳寡糖制品的特性 | 第33-34页 |
| ·壳寡糖对 Hela 细胞增殖的抑制作用 | 第34页 |
| ·壳寡糖对肺癌细胞 A549 增殖的抑制作用 | 第34-35页 |
| ·壳寡糖对 Hela 细胞、A549 细胞形态学的影响 | 第35-36页 |
| ·讨论 | 第36-38页 |
| 第3章 壳寡糖对 HELA 细胞、A549 细胞凋亡的影响 | 第38-49页 |
| ·实验材料 | 第38页 |
| ·仪器 | 第38页 |
| ·试剂 | 第38页 |
| ·实验方法 | 第38-40页 |
| ·Wright’s-Giemsa 染色细胞 | 第38-39页 |
| ·细胞爬片及 AO-EB 染色 | 第39页 |
| ·流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第39页 |
| ·免疫组织化学法检测 | 第39-40页 |
| ·统计学分析 | 第40页 |
| ·实验结果 | 第40-47页 |
| ·壳寡糖对 Hela 细胞和 A549 细胞形态的影响 | 第40-42页 |
| ·AnnexinV-FITC/PI 双标记检测细胞凋亡情况 | 第42-44页 |
| ·壳寡糖对 Hela 细胞中 Bax、Bcl-2、Survivin 表达量的影响 | 第44-45页 |
| ·壳寡糖对 A549 细胞中 Bax、Bcl-2、Survivin 表达量的影响 | 第45-47页 |
| ·讨论 | 第47-49页 |
| 第4章 壳寡糖诱导 HELA 细胞、A549 细胞自噬的实验研究 | 第49-58页 |
| ·实验材料 | 第49-50页 |
| ·仪器 | 第49页 |
| ·试剂 | 第49-50页 |
| ·实验方法 | 第50-51页 |
| ·MDC 荧光染色 COS 处理细胞 | 第50页 |
| ·免疫荧光染色 COS 处理后的细胞 | 第50-51页 |
| ·Western-blot 检测 COS 处理后细胞蛋白的表达 | 第51页 |
| ·实验结果 | 第51-54页 |
| ·MDC 染色观察自噬体的形成 | 第51-52页 |
| ·LC3 标记的免疫荧光染色观察自噬体的形成 | 第52-53页 |
| ·Western-blot 检测 LC3-II/I 比值的变化 | 第53-54页 |
| ·讨论 | 第54-58页 |
| 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 读研期间发表的论文 | 第68页 |
