| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-12页 |
| 第1章 前言 | 第12-29页 |
| ·脊髓肽的研究 | 第12-16页 |
| ·脊髓肽的作用 | 第12-13页 |
| ·脊髓肽MPS的临床应用以及兽医学应用 | 第13-14页 |
| ·脊髓肽的主要成份及其作用研究 | 第14页 |
| ·脊髓肽MP-2的作用研究 | 第14-16页 |
| ·多肽合成的原理 | 第16-24页 |
| ·固相法合成多肽的发展 | 第16-17页 |
| ·固相合成法的缺点 | 第17-18页 |
| ·多肽固相合成的两种方法策略 | 第18-19页 |
| ·侧链的保护及功能基团的活化 | 第19-21页 |
| ·反应过程的检测 | 第21-22页 |
| ·多肽的酸解 | 第22-23页 |
| ·合成多肽的分析鉴定 | 第23-24页 |
| ·多肽的纯化 | 第24-27页 |
| ·合成肽的鉴定及活性测定 | 第24-25页 |
| ·合成肽分离纯化模式的选择 | 第25-27页 |
| ·课题研究背景及意义 | 第27-28页 |
| ·课题研究内容 | 第28-29页 |
| 第2章 实验部分 | 第29-40页 |
| ·实验材料及仪器 | 第29-32页 |
| ·脊髓肽MP-2及其类似物retro-MP-2的固相合成方法 | 第32-37页 |
| ·Fmoc-氨基酸衍生物的制备及检验 | 第32-35页 |
| ·第一个氨基酸与树脂连接实验 | 第35页 |
| ·Fmoc标准曲线的建立方法 | 第35-36页 |
| ·树脂溶胀时间的确定方法 | 第36页 |
| ·脱保护条件的确定方法 | 第36页 |
| ·Kasier法监测反应进度的方法 | 第36页 |
| ·多肽合成具体步骤 | 第36-37页 |
| ·脊髓肽MP-2及其类似物retro-MP-2纯化及制备条件优化 | 第37-38页 |
| ·脊髓肽MP-2及其类似物retro-MP-2生物活性检测方法 | 第38-40页 |
| ·S180细胞的复苏及传代 | 第38页 |
| ·小鼠模型建立 | 第38-39页 |
| ·随机分组给药 | 第39页 |
| ·评定及计算方法 | 第39-40页 |
| 第3章 结果与讨论 | 第40-70页 |
| ·脊髓肽MP-2及其类似物retro-MP-2的固相合成结果 | 第40-55页 |
| ·Fmoc氨基酸衍生物制备结果 | 第40-43页 |
| ·第一个氨基酸连接实验结果 | 第43页 |
| ·Fmoc标准曲线的建立 | 第43-44页 |
| ·树脂溶胀时间的确定 | 第44页 |
| ·脱保护时间的确定 | 第44页 |
| ·合成产物的确定 | 第44-47页 |
| ·合成条件的优化 | 第47-55页 |
| ·脊髓肽MP-2及其类似物retro-MP-2的纯化与制备 | 第55-66页 |
| ·纯化条件的优化 | 第55-61页 |
| ·LC-MS分子离子峰确认 | 第61-62页 |
| ·制备色谱条件的确定 | 第62-63页 |
| ·制备色谱近一步放大优化 | 第63-64页 |
| ·纯品冷冻干燥及HPLC检测结果 | 第64-66页 |
| ·脊髓肽MP-2及其类似物retro-MP-2生物活性的鉴定 | 第66-70页 |
| ·脊髓肽MP-2各实验组肿瘤生长情况 | 第66页 |
| ·脊髓肽MP-2对实体瘤S180的抑制 | 第66-67页 |
| ·副产物X对实体瘤的抑制效果 | 第67-68页 |
| ·retro-MP-2对实体瘤S180的抑制效果 | 第68-70页 |
| 第4章 结论 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-75页 |
| 附录1 | 第75-77页 |
| 附录2 | 第77-78页 |
| 攻读学位论文期间发表的学术文章 | 第78-79页 |
| 致谢 | 第79页 |
