| 摘要 | 第1-13页 |
| ABSTRACT | 第13-18页 |
| 符号说明 | 第18-19页 |
| 第一章 前言 | 第19-23页 |
| 第二章 材料与方法 | 第23-40页 |
| 1. 弹力蛋白酶诱导兔肾下AAA模型的建立 | 第23-25页 |
| ·实验材料 | 第23-24页 |
| ·实验方法 | 第24-25页 |
| ·动物模型制作 | 第24-25页 |
| ·评价标准 | 第25页 |
| 2. 沙利度胺对兔AAA生长的抑制作用及机制 | 第25-40页 |
| ·实验分组与给药 | 第25-26页 |
| ·标本采集 | 第26页 |
| ·超声及造影评价AAA扩张变化情况 | 第26-27页 |
| ·组织病理学评价 | 第27-31页 |
| ·实验材料 | 第27-28页 |
| ·实验方法 | 第28-31页 |
| ·组织石蜡包埋与切片 | 第28-29页 |
| ·苏木素-伊红(HE)染色 | 第29页 |
| ·弹力纤维EVG染色 | 第29-30页 |
| ·免疫组化染色 | 第30-31页 |
| ·Western Blot分析沙利度胺对MMP-9、TNF-a、VEGF表达的影响 | 第31-38页 |
| ·实验材料 | 第31-35页 |
| ·操作步骤 | 第35-38页 |
| ·蛋白提取及浓度测定 | 第35-36页 |
| ·SDS-PAGE电泳 | 第36-37页 |
| ·转膜 | 第37页 |
| ·封闭与杂交 | 第37-38页 |
| ·显影 | 第38页 |
| ·ELISA法检测外周血中TNF-α、IL-1β水平 | 第38-39页 |
| ·统计学方法 | 第39-40页 |
| 第三章 结果 | 第40-54页 |
| ·弹力蛋白酶灌注后1周兔形成AAA | 第40页 |
| ·沙利度胺抑制AAA扩张 | 第40-47页 |
| ·沙利度胺抑制AAA扩张的机制 | 第47-54页 |
| ·沙利度胺抑制动脉瘤壁炎症反应及血管新生 | 第47页 |
| ·沙利度胺抑制动脉瘤壁弹力蛋白的降解 | 第47-52页 |
| ·沙利度胺抑制动脉瘤壁中TNF-α、MMP-9、VEGF表达 | 第52-53页 |
| ·沙利度胺对循环促炎细胞因子TNF-α、IL-1β的影响 | 第53-54页 |
| 第四章 讨论 | 第54-61页 |
| 第五章 结论 | 第61-62页 |
| 第六章 创新和不足 | 第62-63页 |
| 第七章 附录 | 第63-72页 |
| 参考文献 | 第72-82页 |
| 综述 | 第82-93页 |
| 参考文献 | 第88-93页 |
| 致谢 | 第93-94页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文及成果 | 第94-95页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第95-96页 |
| 英文论文1 | 第96-117页 |
| 英文论文2 | 第117-137页 |
