| 摘要 | 第1-4页 |
| ABSTRACT | 第4-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-26页 |
| ·大米蛋白 | 第11-13页 |
| ·大米蛋白资源概况 | 第11页 |
| ·大米蛋白的营养特点 | 第11-12页 |
| ·大米蛋白的制备及国内外大米蛋白产品的开发状况 | 第12-13页 |
| ·氧化及抗氧化 | 第13-14页 |
| ·活性肽 | 第14-16页 |
| ·抗氧化活性肽的研究进展 | 第16-20页 |
| ·天然抗氧化肽 | 第16-17页 |
| ·植物源抗氧化肽 | 第17-19页 |
| ·动物源抗氧化肽 | 第19-20页 |
| ·本课题的立题背景和意义 | 第20-21页 |
| ·本课题的研究内容 | 第21页 |
| 参考文献 | 第21-26页 |
| 第二章 酶解大米蛋白制备抗氧化肽的工艺研究 | 第26-36页 |
| ·引言 | 第26页 |
| ·材料与仪器 | 第26-27页 |
| ·材料 | 第26页 |
| ·主要仪器 | 第26-27页 |
| ·实验方法 | 第27-28页 |
| ·大米蛋白的提取 | 第27页 |
| ·大米蛋白的成分分析 | 第27页 |
| ·酶活力的测定 | 第27页 |
| ·大米蛋白抗氧化肽的制备 | 第27-28页 |
| ·水解度(DH)测定 | 第28页 |
| ·二苯代苦味肼基自由基(DPPH·)清除能力的测定 | 第28页 |
| ·酶解大米蛋白的单因素试验 | 第28页 |
| ·响应面分析法优化酶解工艺试验设计 | 第28页 |
| ·结果与讨论 | 第28-34页 |
| ·大米蛋白成分分析 | 第28页 |
| ·酶源的确定 | 第28-29页 |
| ·不同底物浓度[S]对DH 的影响 | 第29-30页 |
| ·不同酶与底物浓度比[E]/[S]对 DH 的影响 | 第30页 |
| ·不同pH 值对DH 的影响 | 第30-31页 |
| ·不同温度对DH 的影响 | 第31-32页 |
| ·响应面法优化酶解工艺参数 | 第32-34页 |
| ·回归分析 | 第32-34页 |
| ·验证试验 | 第34页 |
| ·本章小结 | 第34页 |
| 参考文献 | 第34-36页 |
| 第三章 大米蛋白酶解产物NHREP 体外抗氧化活性的研究 | 第36-48页 |
| ·前言 | 第36页 |
| ·材料与仪器 | 第36-37页 |
| ·材料 | 第36页 |
| ·主要仪器 | 第36-37页 |
| ·方法 | 第37-38页 |
| ·亚油酸体系中抗氧化能力的检测—硫氰酸铁法 | 第37页 |
| ·二苯代苦味肼基自由基（DPPH·）清除能力的测定 | 第37页 |
| ·超氧阴离子自由基（O_2~(-·)）清除能力的测定 | 第37页 |
| ·羟基自由基（·OH）清除能力的测定 | 第37页 |
| ·螯合金属离子能力的测定 | 第37页 |
| ·还原能力的测定 | 第37页 |
| ·抑制 H_2O_2诱导的小鼠红细胞溶血实验 | 第37页 |
| ·抑制 H_2O_2诱导的小鼠肝匀浆 MDA 生成实验 | 第37页 |
| ·HPLC 测定相对分子质量分布 | 第37-38页 |
| ·统计分析 | 第38页 |
| ·结果与讨论 | 第38-45页 |
| ·不同水解度NHREPs 对亚油酸体系自动氧化的抑制能力 | 第38-39页 |
| ·不同水解度NHREPs 的 DPPH·清除能力 | 第39-40页 |
| ·不同水解度NHREPs 的 O_2~(-·)及·OH 清除能力 | 第40-41页 |
| ·不同水解度NHREPs 的还原能力及金属离子螯合能力 | 第41-42页 |
| ·不同水解度NHREPs 抑制双氧水诱导小鼠红细胞溶血实验 | 第42-43页 |
| ·不同水解度NHREPs 抑制双氧水诱导小鼠肝细胞产生MDA 实验 | 第43页 |
| ·水解度为13 %的NHREP 相对分子质量分布图 | 第43-44页 |
| ·不同水解度NHREPs 体外抗氧化活性的讨论 | 第44-45页 |
| ·本章小结 | 第45页 |
| 参考文献 | 第45-48页 |
| 第四章 大米蛋白抗氧化活性肽的分离纯化 | 第48-59页 |
| ·前言 | 第48页 |
| ·材料与仪器 | 第48-49页 |
| ·材料 | 第48-49页 |
| ·主要仪器 | 第49页 |
| ·实验方法 | 第49-50页 |
| ·样品制备 | 第49页 |
| ·紫外波长检测 | 第49页 |
| ·离子交换层析分离抗氧化活性肽 | 第49页 |
| ·凝胶色谱Sephadex G-15 分离抗氧化活性肽 | 第49-50页 |
| ·半制备 RP-HPLC 分离抗氧化活性肽 | 第50页 |
| ·RP-HPLC 分析抗氧化活性肽 | 第50页 |
| ·DPPH·清除能力的测定 | 第50页 |
| ·抗氧化肽氨基酸组成分析 | 第50页 |
| ·结果与讨论 | 第50-56页 |
| ·NHREP 的紫外光谱检测 | 第50-51页 |
| ·离子交换层析分离 NHREP | 第51-52页 |
| ·凝胶色谱分离纯化F 组分 | 第52-54页 |
| ·凝胶色谱分离条件的确定 | 第52-53页 |
| ·分离纯化F 组分 | 第53-54页 |
| ·半制备RP-HPLC 分离 NHREP 的凝胶柱洗脱分离组分F3 | 第54-55页 |
| ·抗氧化活性肽F36 和 F3c 的纯度 | 第55页 |
| ·抗氧化活性肽F36 和 F3c 的氨基酸组成分析 | 第55-56页 |
| ·本章小结 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-59页 |
| 第五章 大米蛋白抗氧化活性肽F38 和F3C 的结构鉴定 | 第59-69页 |
| ·前言 | 第59-60页 |
| ·材料与仪器 | 第60页 |
| ·材料 | 第60页 |
| ·主要仪器 | 第60页 |
| ·实验方法 | 第60页 |
| ·MALDI-TOF MS 质谱测定F36 和F3c 质量指纹图谱 | 第60页 |
| ·TOF-MS-MS 质谱分析测定F36 和F3c 序列 | 第60页 |
| ·结果与讨论 | 第60-66页 |
| ·组分 F36 和F3c 的质量指纹图谱 | 第60-62页 |
| ·组分 F36 和F3c 的序列测定 | 第62-65页 |
| ·抗氧化活性肽的序列比对 | 第65-66页 |
| ·本章小结 | 第66页 |
| 参考文献 | 第66-69页 |
| 第六章 抗氧化活性肽FRDEHKK 的固相合成及活性验证 | 第69-81页 |
| ·前言 | 第69-70页 |
| ·材料与仪器 | 第70页 |
| ·材料 | 第70页 |
| ·主要仪器 | 第70页 |
| ·实验方法 | 第70-72页 |
| ·Fmoc-Tyr(tBu)-OH 与 Wang 树脂的连接 | 第70页 |
| ·FRDEHKK 肽链的延伸 | 第70-71页 |
| ·肽树脂的切割与产物的分析 | 第71页 |
| ·肽树脂的切割 | 第71页 |
| ·纯化和质谱鉴定 | 第71页 |
| ·亚油酸体系中抗氧化能力的检测—硫氰酸铁法 | 第71页 |
| ·DPPH·清除能力的测定 | 第71-72页 |
| ·O_2~(-·)清除能力的测定 | 第72页 |
| ··OH 清除能力的测定 | 第72页 |
| ·螯合金属离子能力的测定 | 第72页 |
| ·还原能力的测定 | 第72页 |
| ·结果与讨论 | 第72-78页 |
| ·合成 FRDEHKK 的纯度及质谱鉴定 | 第72-74页 |
| ·FRDEHKK 对亚油酸体系自动氧化的抑制能力 | 第74页 |
| ·FRDEHKK 的DPPH·清除能力 | 第74-75页 |
| ·FRDEHKK 的O_2~(-·)清除能力 | 第75页 |
| ·FRDEHKK 的·OH 清除能力 | 第75-76页 |
| ·FRDEHKK 的还原能力 | 第76页 |
| ·FRDEHKK 的金属离子螯合能力 | 第76-77页 |
| ·肽序列与抗氧化活性关系的探讨 | 第77-78页 |
| ·本章小结 | 第78页 |
| 参考文献 | 第78-81页 |
| 论文主要结论 | 第81-83页 |
| 展望 | 第83-84页 |
| 论文创新点 | 第84-85页 |
| 致谢 | 第85-87页 |
| 攻读博士学位论文期间发表的论文 | 第87页 |
| 申请专利 | 第87页 |
