中文摘要 | 第1-10页 |
英文摘要 | 第10-13页 |
引言 | 第13-14页 |
第一章 文献综述 | 第14-33页 |
1 猪肌内脂肪研究概况 | 第14-33页 |
·脂肪细胞的发育 | 第14-20页 |
·脂肪细胞的分化,增殖和肥大 | 第14-16页 |
·脂肪细胞形成的分子生物学调控 | 第16-20页 |
·肌内脂肪 | 第20-23页 |
·肌内脂肪研究概况 | 第21页 |
·肌内脂肪的合成 | 第21-22页 |
·肌内脂肪的转运 | 第22页 |
·肌内脂肪的分解 | 第22-23页 |
·猪肌内脂肪沉积的分子调节机制 | 第23-24页 |
·本研究的目的意义 | 第24-25页 |
参考文献 | 第25-33页 |
第二章 不同肌内脂肪含量个体背最长肌基因差异表达研究 | 第33-61页 |
1.实验材料 | 第33-36页 |
·试验动物 | 第33页 |
·网络资源及软件 | 第33-34页 |
·试剂 | 第34-35页 |
·RNA提取试剂 | 第34页 |
·差异显示PCR、RT-PCR、Real-Time PCR及电泳试剂 | 第34页 |
·电泳所需溶液配方 | 第34页 |
·染色溶液的配制 | 第34-35页 |
·T-A克隆试剂 | 第35页 |
·差异显示PCR引物 | 第35页 |
·仪器设备 | 第35-36页 |
2 实验方法 | 第36-45页 |
·背最长肌肌内脂肪含量的测定 | 第36页 |
·背最长肌组织RNA提取 | 第36-37页 |
·甲醛变性琼脂糖凝胶电泳鉴定RNA质量 | 第37页 |
·RNA池的制备 | 第37页 |
·DNase I处理 | 第37页 |
·cDNA的合成 | 第37-38页 |
·DDRT-PCR反应 | 第38页 |
·12%聚丙烯酰胺凝胶制作及电泳 | 第38-39页 |
·银染法显色 | 第39页 |
·差异片段的切取 | 第39-40页 |
·差异片段的再扩增 | 第40页 |
·PCR产物克隆 | 第40-42页 |
·电子延伸及部分测序 | 第42页 |
·RT-PCR定性鉴定阳性克隆 | 第42-43页 |
·real-time PCR定量分析 | 第43-45页 |
3.结果 | 第45-53页 |
·RNA纯度与浓度 | 第45页 |
·cDNA鉴定结果 | 第45页 |
·mRNA差异显示结果 | 第45-46页 |
·差异片段的回收与再次扩增 | 第46页 |
·差异片段的克隆及PCR鉴定 | 第46-47页 |
·差异片段的序列分析 | 第47-48页 |
·电子延伸及部分测序 | 第48-49页 |
·RT-PCR定性鉴定 | 第49-50页 |
·real-time PCR定量分析结果 | 第50-53页 |
4.讨论 | 第53-57页 |
·SRC-1 mRNA表达水平与肌内脂肪含量负相关 | 第54-56页 |
·SRrp130 mRNA表达水平与肌内脂肪含量正相关 | 第56-57页 |
参考文献 | 第57-61页 |
第三章 猪共激活子p160家族全长cDNA的克隆,表达及其对背最长肌肌内脂肪沉积的影响 | 第61-81页 |
引言 | 第61-62页 |
1 实验材料 | 第62-63页 |
·试验动物 | 第62页 |
·网络资源及软件 | 第62页 |
·试剂 | 第62页 |
·RNA提取试剂 | 第62页 |
·克隆、Real-Time PCR及电泳试剂 | 第62页 |
·仪器设备 | 第62-63页 |
2 实验方法 | 第63-66页 |
·背最长肌肌内脂肪含量的测定及背最长肌组织RNA提取 | 第63页 |
·第一链cDNA的合成 | 第63页 |
·猪NCOA1,NcOA2,NCOA3克隆 | 第63-64页 |
·PCR扩增及凝胶电泳 | 第64页 |
·real-time PCR定量分析 | 第64-66页 |
3 结果 | 第66-76页 |
·猪p160家族成员测序及选择性剪切体鉴定 | 第66-72页 |
·猪p160家族成员氨基酸序列比对及其特征 | 第72页 |
·猪p160家族成员在背最长肌中的表达以及它们对肌内脂肪含量的影响 | 第72-76页 |
4.讨论 | 第76-78页 |
·猪p160家族成员在进化上高度保守 | 第76页 |
·p160家族成员与肌内脂肪代谢 | 第76-77页 |
·NCOA2是肌内脂肪QTL区域内的候选基因 | 第77-78页 |
参考文献 | 第78-81页 |
论文总体结论 | 第81-83页 |
致谢 | 第83-85页 |
攻读硕士学位期间发表的学术论文目录 | 第85-86页 |