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红鳍东方鲀重编程因子Oct4和Sox2原核表达载体的构建、精巢细胞原核表达产物的导入及其检测研究

摘要第1-7页
Abstract第7-11页
第一章 前言第11-19页
   ·海水养殖鱼类细胞系的应用第11-15页
   ·穿膜肽蛋白研究进展第15-18页
   ·本课题的基本思路第18-19页
第二章 原核表达载体pET32a-Oct4-11R 与pET32a -Sox2-11R 的构建第19-33页
   ·实验用品第19-20页
     ·主要实验仪器第19-20页
     ·实验试剂第20页
     ·培养基和常用溶液配制第20页
     ·实验材料第20页
   ·实验方法第20-26页
     ·引物的设计与合成第20-21页
     ·红鳍东方鲀基因组DNA 的提取第21-22页
     ·PCR 扩增Oct4 与Sox2 基因第22页
     ·PCR 产物的凝胶回收第22-23页
     ·扩增产物与pMD18-T 载体的连接第23页
     ·两种T 载体质粒向大肠杆菌转化第23-24页
     ·质粒DNA 的提取第24页
     ·表达载体与基因的限制性内切酶酶切第24-25页
     ·酶切后基因片段与原核表达载体pET32a 的体外连接第25页
     ·重组表达载体向大肠杆菌的转化第25-26页
     ·表达载体的酶切鉴定第26页
   ·结果与分析第26-30页
     ·获得两种特异PCR 产物第26-28页
     ·重组表达载体的构建与酶切鉴定第28-30页
   ·讨论第30-32页
     ·两种重编程因子的选择第30-31页
     ·关于两种目的基因的扩增第31页
     ·重组载体的连接和鉴定第31-32页
   ·本章小结第32-33页
第三章 重组原核表达载体在大肠杆菌中的诱导表达及重组蛋白的纯化、复性第33-46页
   ·实验用品第33-36页
     ·主要实验仪器第33-34页
     ·主要试剂第34页
     ·所用溶液的配制第34-36页
   ·实验方法第36-38页
     ·pET32a-oct4-11R 与pET32a-sox2-11R 重组载体的原核表达第36页
     ·重组蛋白的纯化第36-37页
     ·变性蛋白的透析复性第37页
     ·超滤与除菌第37-38页
   ·结果与分析第38-42页
     ·两种重组载体的原核表达第38-39页
     ·超声破菌方法的最适条件第39-40页
     ·在最适诱导条件及破菌条件下两种重组载体的原核表达第40-41页
     ·重组蛋白的纯化第41页
     ·非变性重组蛋白的除盐浓缩与变性蛋白的复性、浓缩第41-42页
   ·讨论第42-45页
     ·pET32 原核表达载体的选择第42页
     ·大肠杆菌BL21(DE3)表达菌株的选择第42页
     ·超声破菌方法的最适条件第42-43页
     ·重组蛋白的纯化第43-44页
     ·包涵体的形成与影响其形成的因素第44页
     ·Sox2 包涵体蛋白的复性及除盐第44-45页
   ·本章小结第45-46页
第四章 重组蛋白导入红鳍东方鲀精巢细胞第46-57页
   ·实验用品第46-48页
     ·主要实验仪器第46-47页
     ·实验试剂第47页
     ·实验中所用溶液配制方法第47-48页
     ·实验材料第48页
   ·实验方法第48-51页
     ·两种重组蛋白的浓度测定第48-49页
     ·确定重组蛋白进入细胞的最佳浓度第49-50页
     ·免疫荧光检测两种重组蛋白在红鳍东方鲀细胞内的定位第50-51页
   ·结果第51-55页
     ·检测重组蛋白进入细胞的最佳浓度结果第51-53页
     ·免疫荧光检测重组蛋白在红鳍东方鲀精巢细胞内的定位第53-55页
   ·讨论第55-57页
参考文献第57-62页
致谢第62-63页
在学期间发表的学术论文第63页

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