中文摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
序言 | 第9-11页 |
第一部分:文献综述 | 第11-23页 |
1.白血病的发病机制 | 第11页 |
2.Ara-C治疗急性白血病的主要机理 | 第11-14页 |
·Ara-C通过抑制DNA聚合酶和干扰DNA合成起作用 | 第12-13页 |
·Ara-C与细胞周期的关系 | 第13页 |
·Ara-C的诱导分化作用 | 第13页 |
·Ara-C通过Caspase家族成员介导细胞凋亡 | 第13-14页 |
3.Ara-C的毒性反应 | 第14页 |
4.细胞凋亡与白血病的研究现状 | 第14-19页 |
·细胞凋亡与细胞坏死的研究 | 第14-16页 |
·细胞凋亡主要相关基因及其在白血病发病中的作用 | 第16-19页 |
5.造血细胞生长因子的调节作用 | 第19-21页 |
6.Ara-C诱导细胞凋亡和对bcl-2表达的研究意义 | 第21-23页 |
第二部分:不同剂量Ara-C对HL60细胞凋亡的影响 | 第23-49页 |
1.材料 | 第23页 |
2.实验方法 | 第23-31页 |
·RPMI-1640细胞培养液的配制 | 第23-24页 |
·细胞培养 | 第24-25页 |
·细胞形态学的初步观察 | 第25页 |
·HL60细胞生长曲线的绘制 | 第25页 |
·MTT法分析Ara-C对HL60细胞的生长抑制作用 | 第25页 |
·HE染色观察Ara-C对HL60细胞形态学变化的影响 | 第25-26页 |
·应用透射电镜观察HL60细胞的超微结构变化 | 第26-28页 |
·应用流式细胞仪分析细胞周期时相分布 | 第28页 |
·流式细胞仪分析Ara-C对HL60细胞凋亡的影响 | 第28-29页 |
·DNA琼脂糖凝胶电泳 | 第29-30页 |
·统计学处理 | 第30-31页 |
3.结果与分析 | 第31-49页 |
·倒置显微镜下的细胞形态学观察 | 第31-33页 |
·HL60细胞生长曲线的绘制 | 第33-34页 |
·不同剂量Ara-C对HL60细胞的生长抑制作用 | 第34-36页 |
·HE染色观察细胞的形态学变化 | 第36-38页 |
·透射电镜观察HL60细胞超微结构的变化 | 第38-42页 |
·不同剂量Ara-C对HL60细胞周期时相分布的影响 | 第42-45页 |
·流式细胞仪分析Ara-C对HL60细胞凋亡的影响 | 第45-48页 |
·DNA琼脂糖凝胶电泳分析结果 | 第48-49页 |
第三部分:Ara-C与G-CSF联合应用对HL60细胞凋亡的影响 | 第49-54页 |
1.材料 | 第49页 |
2.实验方法 | 第49-51页 |
·实验分组: | 第49页 |
·Ara-C与G-CSF联合应用对HL60细胞生长抑制作用 | 第49-50页 |
·Ara-C与G-CSF联合应用对HL60细胞凋亡的影响 | 第50页 |
·统计学处理 | 第50-51页 |
3.结果与分析 | 第51-54页 |
·Ara-C与G-CSF联合应用对HL60细胞的生长抑制作用 | 第51-52页 |
·Ara-C与G-CSF联合应用对HL60细胞凋亡的影响 | 第52-54页 |
第四部分:不同剂量Ara-C对HL60细胞bcl-2表达的影响 | 第54-66页 |
1.材料 | 第54页 |
2.实验方法 | 第54-59页 |
·应用免疫组化染色及结合MIVNT显微图像分析系统研究Ara-C对HL60细胞Bcl-2蛋白表达的影响 | 第54-55页 |
·应用流式细胞仪及结合免疫荧光标记法分析Ara-C对HL60细胞Bcl-2蛋白表达水平的变化 | 第55-56页 |
·应用逆转录及聚合酶链式反应(RT-PCR)技术研究Ara-C对HL60细胞bcl-2 mRNA表达水平的影响 | 第56-58页 |
·统计学处理 | 第58-59页 |
3.结果与分析 | 第59-66页 |
·免疫组化ABC法分析Ara-C对Bcl-2蛋白表达的影响 | 第59-60页 |
·流式细胞仪分析Bel-2蛋白表达水平的变化 | 第60-63页 |
·Ara-C对HL60细胞bcl-2 mRNA表达水平的影响 | 第63-66页 |
第五部分:讨论与小结 | 第66-72页 |
1.讨论 | 第66-69页 |
2.小结 | 第69-72页 |
参考文献 | 第72-79页 |
中英文缩略词表 | 第79-80页 |
致谢 | 第80页 |