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稳定表达人GM-CSF、IL-4的EA.hy926细胞株建立

摘要第1-4页
Abstract第4-10页
引言第10-13页
第一部分 建立分别表达GM-CSF和IL-4的EA.hy926重组细胞系第13-36页
 第一部分 第一章 实验材料第14-17页
     ·载体和质粒第14页
     ·细胞株第14页
     ·试剂第14-15页
     ·引物第15页
     ·仪器第15-16页
     ·细胞培养基的配置第16页
     ·常用软件及数据库第16-17页
 第一部分 第二章 实验方法第17-31页
     ·目的基因IL-4的获得第17-19页
       ·PCR扩增IL-4基因第17页
       ·DNA纯化试剂盒纯化PCR产物第17-18页
       ·纯化产物估量第18页
       ·纯化产物IL-4与Peasy-T1载体连接第18页
       ·转化感受态细胞第18-19页
     ·GM-CSF基因的获得第19-20页
       ·PCR扩增GM-CSF基因第19页
       ·DNA纯化试剂盒纯化PCR产物第19页
       ·纯化产物估量第19页
       ·纯化产物GM-CSF与pEASY-T1载体连接第19-20页
       ·转化感受态细胞第20页
     ·目的基因IL-4连入pBPLV绒体第20-22页
       ·载体和片段双酶切反应第20-21页
       ·片段与载体酶切后纯化第21页
       ·纯化产物IL-4与pBPLV载体连接第21页
       ·连接产物转化第21-22页
     ·目的基因GM-CSF连入pBPLV载体第22-24页
       ·载体和片段双酶切第22页
       ·片段与载体酶切后纯化第22-23页
       ·纯化产物GM-CSF与pBPLV载体连接第23页
       ·连接产物转化第23-24页
     ·阳性克隆的筛选第24页
     ·阳性克隆的鉴定第24-26页
       ·质粒提取第24-25页
       ·双酶切鉴定第25-26页
     ·质粒大量提取第26-27页
     ·细胞培养第27-28页
       ·细胞复苏第27-28页
       ·细胞传代培养第28页
       ·细胞冻存第28页
     ·慢病毒的包装第28-29页
       ·293T细胞的培养第28页
       ·慢病毒包装第28-29页
     ·慢病毒感染EA.hy 926细胞第29-31页
 第一部分 第三章 实验结果第31-35页
     ·获得目的基因IL-4和GM-CSF第31页
     ·重组质粒构建第31-34页
       ·菌落PCR第31-32页
       ·重组质粒双酶切鉴定第32-33页
       ·基因测序结果第33-34页
     ·慢病毒包装结果第34页
     ·慢病毒感染结果第34-35页
 第一部分 第四章 实验结论第35-36页
第二部分 重组细胞的细胞性质确定第36-50页
 第二部分 第一章 实验材料第36-40页
     ·实验试剂第36-37页
     ·实验仪器第37页
     ·Western blot主要溶液配制方法第37-40页
 第二部分 第二章 实验方法第40-45页
     ·重组细胞的生长趋势第40页
     ·RT-PCR检测重组细胞目的基因的表达第40-41页
       ·提取总RNA第40页
       ·RT-PCR反应第40-41页
     ·Western blot测定感染后细胞蛋白水平的表达第41-43页
       ·细胞培养液超滤浓缩制备样品第41页
       ·BCA定量第41-42页
       ·蛋白质聚丙烯凝胶电泳第42页
       ·蛋白质印迹第42-43页
       ·免疫反应第43页
     ·酶联免疫吸附试剂盒测定细胞的分泌量第43-44页
     ·制备饲养层细胞第44-45页
 第二部分 第三章 实验结果第45-49页
     ·重组细胞生长曲线的测定第45页
     ·RT-PCR方法检测在基因水平的表达第45-46页
     ·Western blot结果第46-47页
     ·酶联免疫吸附结果第47-48页
     ·制备饲养层细胞第48-49页
 第二部分 第四章 实验结论第49-50页
第三部分 讨论第50-52页
参考文献第52-55页
综述第55-62页
 参考文献第58-62页
攻读学位期间的研究成果第62-63页
致谢第63-64页

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