| 缩略词表 | 第1-7页 |
| 图表序列 | 第7-9页 |
| 中文摘要 | 第9-11页 |
| 英文摘要 | 第11-14页 |
| 正文 | 第14页 |
| 前言 | 第14-17页 |
| 第一部分 大鼠脑皮质前部组胺释放量与其觉醒时间的相关性 | 第17-29页 |
| 1 材料与方法 | 第17-21页 |
| ·实验动物 | 第17页 |
| ·实验方法 | 第17-21页 |
| ·大鼠头部放入EEG电极、微透析导管，颈部放入EMG电极手术 | 第17页 |
| ·大鼠头部的电极与记录导线相连 | 第17页 |
| ·大鼠脑皮质前部EEG/EMG的记录，透析液的收集 | 第17-18页 |
| ·睡眠和觉醒状态的分析方法 | 第18-19页 |
| ·HPLC - 荧光测定法测定大鼠脑皮质前部透析液内组胺含量 | 第19页 |
| ·统计学分析 | 第19-21页 |
| 2 实验结果 | 第21-22页 |
| ·大鼠脑皮质组胺释放量及其相应的觉醒时间在日间与夜间的变化 | 第21页 |
| ·大鼠脑皮质组胺释放量与其觉醒时间的相关性 | 第21-22页 |
| 3 讨论 | 第22页 |
| 4 小结 | 第22-29页 |
| 第二部分 Ciproxifan 对WT和H1RKO小鼠睡眠-觉醒的影响及机制研究 | 第29-48页 |
| 1 材料与方法 | 第29-33页 |
| ·实验动物与药品 | 第29页 |
| ·实验分组 | 第29页 |
| ·实验方法 | 第29-33页 |
| ·小鼠头部、颈部EEG/EMG电极的安放及EEG/EMG 的记录 | 第29-30页 |
| ·H1RKO小鼠的PCR鉴定 | 第30-31页 |
| ·实验步骤 | 第31页 |
| ·统计学分析 | 第31-33页 |
| 2 实验结果 | 第33-36页 |
| ·H1RKO小鼠的PCR鉴定 | 第33页 |
| ·H1RKO小鼠的一般特性 | 第33页 |
| ·H1RKO小鼠正常情况下的睡眠和觉醒 | 第33页 |
| ·Ciproxifan对WT小鼠觉醒时间的影响 | 第33-34页 |
| ·Ciproxifan对H1RKO小鼠觉醒时间的影响 | 第34-36页 |
| 3 讨论 | 第36-38页 |
| 4 小结 | 第38-48页 |
| 第三部分 Ciproxifan对WT和H1RKO小鼠脑皮质组胺释放的影响 | 第48-57页 |
| 1 材料与方法 | 第48-50页 |
| ·实验动物与药品 | 第48页 |
| ·实验分组 | 第48页 |
| ·实验方法 | 第48-50页 |
| ·小鼠皮质前部透析液的收集 | 第48-49页 |
| ·HPLC-荧光测定法测定小鼠皮质前部透析液内组胺含量 | 第49页 |
| ·统计学分析 | 第49页 |
| ·主要仪器和材料 | 第49-50页 |
| 2 实验结果 | 第50-52页 |
| ·Ciproxifan对麻醉状态下WT小鼠皮质组胺释放的影响 | 第50页 |
| ·Ciproxifan对麻醉状态下H1RKO小鼠皮质组胺释放的影响 | 第50-52页 |
| 3 讨论 | 第52页 |
| 4 小结 | 第52-57页 |
| 第四部分 Ciproxifan 对WT小鼠脑内不同区域HDC活性及组胺含量的影响 | 第57-71页 |
| 1 材料与方法 | 第57-62页 |
| ·实验动物与药品 | 第57页 |
| ·实验分组 | 第57页 |
| ·实验方法 | 第57-62页 |
| ·测定脑内不同区域HDC活性及组胺含量的脑组织准备 | 第57页 |
| ·下丘脑、丘脑和皮质HDC活性的测定 | 第57-59页 |
| ·HPLC法-荧光测定法测定小鼠各脑组织的组胺含量 | 第59-60页 |
| ·统计学分析 | 第60-62页 |
| 2 实验结果 | 第62-64页 |
| ·Ciproxifan对WT小鼠下丘脑、丘脑和皮质HDC活性的影响 | 第62页 |
| ·Ciproxifan对WT小鼠下丘脑、丘脑、皮质、纹状体、海马、中脑和延髓含量的影响 | 第62-64页 |
| 3 讨论 | 第64-65页 |
| 4 小结 | 第65-71页 |
| 全文结论及本文创新点 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-78页 |
| 综述 | 第78-103页 |
| 附录1 博士期间已发表及待发表文章目录 | 第103-104页 |
| 附录2 致谢 | 第104-105页 |
