| 一、英文缩写字表 | 第1-14页 |
| 二、摘要(附英文摘要) | 第14-25页 |
| 三、文献综述 | 第25-54页 |
| (一).TF抗原特异性的研究 | 第25-34页 |
| 1.TF研究概况 | 第25-27页 |
| 2.TF的抗原特异性 | 第27-34页 |
| (二).TF活性成分的分离纯化 | 第34-44页 |
| (三).单纯疱疹病毒感染与治疗 | 第44-54页 |
| 1.单纯疱疹病毒感染 | 第44-46页 |
| 2.HSV感染与免疫 | 第46-48页 |
| 3.HSV感染的治疗 | 第48-54页 |
| 四.本研究的目的 | 第54-55页 |
| 五.统计学处理 | 第55-56页 |
| 六.论文正文 | 第56-210页 |
| (一).HSV-1特异转移因子的抗原依赖活性 | 第56-138页 |
| 1.前言 | 第56-59页 |
| 2.材料 | 第59-62页 |
| ·动物 | 第59页 |
| ·仪器 | 第59页 |
| ·试剂 | 第59-60页 |
| ·抗原 | 第60-62页 |
| 3.方法 | 第62-66页 |
| ·动物免疫 | 第62页 |
| ·TF HSV-1的制备 | 第62-63页 |
| ·TFn的制备 | 第63页 |
| ·~(51)Cr—白细胞粘附抑制实验 | 第63-64页 |
| ·皮肤实验 | 第64页 |
| ·HSV—1腹腔接种 | 第64页 |
| ·HSV—1脑腔接种 | 第64-65页 |
| ·LD_(50)测定 | 第65页 |
| ·脑常规组织学制片染色 | 第65页 |
| ·PAP免疫酶染色 | 第65-66页 |
| 4.结果 | 第66-127页 |
| ·TF理化性质分析 | 第67-70页 |
| ·~(51)Cr—白细胞粘附抑制实验检测TFHSV—1抗原特异活性 | 第70-78页 |
| ·~(51)Cr—标记白细胞最佳条件的选择 | 第70-72页 |
| ·HSV-1抗原浓度与TF剂量选择 | 第72-75页 |
| ·TF HSV—1依赖特异抗原的粘附抑制活性测定 | 第75-78页 |
| ·TF HSV—1介导抗原特异皮肤迟发型超敏反应 | 第78-95页 |
| ·TF HSV—1剂量与皮肤迟发型超敏反应的关系 | 第80-82页 |
| ·TF HSV—1介导迟发型超敏反应的抗原依赖性 | 第82-95页 |
| ·TF HSV—1介导抗原特异皮肤迟发型超敏反应的定量测定 | 第83-84页 |
| ·皮试部位原组织学检查 | 第84-95页 |
| ·TF HSV—1对HSV—1感染小鼠的保护作用 | 第95-127页 |
| ·HSV-1脑炎小鼠模型的建立 | 第96-118页 |
| ·HSV-1腹腔攻击小鼠的临床表现 | 第97-98页 |
| ·HSV-1感染小鼠的脑形态学检查 | 第98-100页 |
| ·HSV-1感染小鼠脑PAP免疫酶染色 | 第100-118页 |
| ·TF HSV—1对HSV—1感染小鼠的保护作用 | 第118-127页 |
| ·TF HSV—1对HSV—1感染小鼠存活时间及存活率的影响 | 第119-120页 |
| ·TF处理小鼠脑形态学检查 | 第120页 |
| ·正常小鼠脑形态学检查 | 第120-127页 |
| 5.讨论 | 第127-137页 |
| ·特异TF的制备 | 第127-130页 |
| ·抗原选择 | 第127-128页 |
| ·供体致敏 | 第128-130页 |
| ·分子量范围 | 第130页 |
| ·~(51)Cr-白细胞粘附抑制实验是检测TF特异活性的灵敏方法 | 第130-133页 |
| ·TF_(HSV-1)对HSV-1感染小鼠的保护作用 | 第133-137页 |
| 6.小结 | 第137-138页 |
| (二).HSV-1特异转移因子活性成分的分离 | 第138-165页 |
| 1.前言 | 第138-140页 |
| 2.材料 | 第140-142页 |
| ·仪器 | 第140页 |
| ·试剂 | 第140-142页 |
| 3.方法 | 第142-144页 |
| ·HSV-1抗原免疫吸附剂的制备 | 第142页 |
| ·亲和色谱法纯化TF_(HSV-1)特异活性成分 | 第142-143页 |
| ·对照吸附剂的制备 | 第143-144页 |
| 4.结果 | 第144-156页 |
| ·亲和色谱法分离TF_(HSV-1)特异成分 | 第144-149页 |
| ·BSA和戊二醛用量选择 | 第144页 |
| ·偶联率测定 | 第144-145页 |
| ·选译TF_(HSV-1)与免疫吸附剂的最佳反应时间 | 第145-146页 |
| ·活性成分洗脱条件的选择 | 第146-148页 |
| ·免疫吸附剂的特异性 | 第148-149页 |
| ·TF_(HSV-1)特异成分体外介导对相关抗原的白细胞粘附抑制 | 第149-152页 |
| ·不同浓度TF_(HSV-1)特异成分对相关抗原的粘附抑制效应 | 第149-150页 |
| ·TF_(HSV-1)特异成分介导抗原依赖的白细胞粘附抑制 | 第150-151页 |
| ·TF_(HSV-1)纯化前后LAI活性的比较 | 第151-152页 |
| ·TF_(HSV-1)特异成分在HSV-1感染过程中的保护效应 | 第152-156页 |
| ·TF_(HSV-1)保护剂量曲线 | 第152-153页 |
| ·TF_(HSV-1)特异成分对HSV-1感染小鼠的保护效应 | 第153-156页 |
| 5.讨论 | 第156-164页 |
| ·TF特异活性成分的分离 | 第156-160页 |
| ·TF_(HSV-1)纯化前后活性的比较 | 第160-164页 |
| 6.小结 | 第164-165页 |
| (三).HSV-1特异转移因子活性成分的化学本质 | 第165-210页 |
| 1.前言 | 第165-167页 |
| 2.材料 | 第167-171页 |
| ·仪器 | 第167-168页 |
| ·试剂 | 第168-171页 |
| 3.方法 | 第171-183页 |
| ·高效液相色谱法 | 第171-172页 |
| ·试剂配制 | 第171页 |
| ·操作 | 第171-172页 |
| ·离子交换色谱 | 第171页 |
| ·反相色谱 | 第171-172页 |
| ·薄层层析 | 第172-174页 |
| ·试剂配制 | 第172页 |
| ·制板 | 第172-173页 |
| ·薄层析 | 第173-174页 |
| ·等电聚焦 | 第174-177页 |
| ·试剂配制 | 第174-175页 |
| ·制胶 | 第175页 |
| ·电泳 | 第175-177页 |
| ·电泳后凝胶的处理 | 第177页 |
| ·凝胶层析法测定分子量 | 第177-178页 |
| ·考马斯亮兰法测定多肽量 | 第178-180页 |
| ·试剂配制 | 第178-179页 |
| ·绘制标准曲线及样品测定 | 第179-180页 |
| ·二苯胺法测定DNA量 | 第180-181页 |
| ·试剂配制 | 第180页 |
| ·操作 | 第180-181页 |
| ·Orcinol法测定RNA量 | 第181-182页 |
| ·试剂配制 | 第181-182页 |
| ·操作 | 第182页 |
| ·氨基酸分析 | 第182-183页 |
| 4.结果 | 第183-204页 |
| ·TF高效液相色谱分析 | 第183-193页 |
| ·离子交换色谱 | 第183-188页 |
| ·反相色谱 | 第188-193页 |
| ·TF_(HSV-1)特异成分薄层层析分析 | 第193-195页 |
| ·TF等电聚焦分析 | 第195-198页 |
| ·TF_(HSV-1)特异成分多肽、DNA和RNA含量测定 | 第198页 |
| ·TF_(HSV-1)特异成分分子量测定 | 第198-202页 |
| ·TF_(HSV-1)特异成分氨基酸组成及含量 | 第202-204页 |
| 5.讨论 | 第204-209页 |
| ·TF特异活性成分的化学本质 | 第204-207页 |
| ·TF与T细胞受体 | 第207-209页 |
| 6.小结 | 第209-210页 |
| 七.结论 | 第210-213页 |
| 八.致谢 | 第213-214页 |
| 九.参考文献 | 第214-266页 |
