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人脐带血干细胞移植治疗糖尿病鼠下肢缺血的研究

常见英文缩略词第1-8页
中文摘要第8-11页
英文摘要第11-15页
引言第15-17页
第一章 脐带血CD34~+细胞的分离、培养、扩增和鉴定第17-30页
 引言第17页
 一、材料第17-19页
  (一) 主要仪器第17页
  (二) 主要实验材料第17-19页
  (三) 主要溶液配制第19页
 二、方法第19-22页
  (一) 脐带血来源第19页
  (二) 6%羟乙基淀粉沉降法分离单核细胞第19-20页
  (三) Ficoll淋巴细胞分离液法分离单核细胞第20页
  (四) CD34~+细胞的磁珠标记和分选第20-21页
  (五) 细胞存活率测定第21页
  (六) CD34~+细胞体外液体扩增培养第21页
  (七) 细胞免疫抗原的检测第21-22页
  (八) 统计学处理第22页
 三、结果第22-23页
  (一) 脐带血干细胞的分离第22页
  (二) 无血清、无基质短期液体培养下脐血干细胞的体外扩增结果第22-23页
  (三) 脐带血干细胞的鉴定第23页
 四、讨论第23-27页
  (一) 脐带血单核细胞和CD34~+细胞的获取方法第23-25页
  (二) CD34~+细胞培养基的安全性第25页
  (三) CD34~+细胞的扩增的必要性及方法第25-27页
 参考文献第27-30页
第二章 糖尿病裸鼠模型和下肢缺血模型的制备第30-39页
 引言第30页
 一、材料第30-31页
  (一) 实验动物及饲料第30页
  (二) 试验物品第30-31页
  (三) 试验试剂第31页
 二、方法第31-33页
  (一) 裸鼠的饲养及糖尿病模型的制备第31-32页
  (二) 裸鼠下肢缺血模型的制备第32页
  (三) 肢体功能的评估第32页
  (四) 红外热成像系统检测下肢体温第32-33页
  (五) 取材第33页
  (六) 苏木素-伊红(HE)染色第33页
  (七) 统计学处理第33页
 三、结果第33-35页
  (一) 裸鼠体重、饮水及饮食量的变化第33-34页
  (二) 糖耐量试验结果的比较第34页
  (三) 生化指标变化第34页
  (四) 下肢缺血后肢体变化第34页
  (五) 下肢温度变化第34页
  (六) 组织病理变化第34-35页
 四、讨论第35-37页
  (一) 实验性糖尿病模型第35-36页
  (二) 自发性糖尿病动物模型第36页
  (三) 重症下肢缺血的判定第36-37页
 参考文献第37-39页
第三章 脐带血干细胞移植治疗糖尿病鼠下肢缺血研究第39-58页
 引言第39页
 一、材料第39-40页
  (一) 实验动物第39页
  (二) 试验物品第39-40页
  (三) 实验试剂第40页
 二、方法第40-48页
  (一) 分离脐带血CD34~+细胞,进行培养,方法同第一部分第40页
  (二) 按照第二部分方法制备糖尿病裸鼠下肢缺血模型第40页
  (三) 细胞培养第7天,下肢缺血模型制作成功后进行细胞移植第40-41页
  (四) 红外热成像系统测量体温变化第41页
  (五) 裸鼠饲养28天后取标本进行免疫病理,分子生物学检测第41页
  (六) CD31免疫组化检侧毛细血管密度第41页
  (七) 实时定量逆转录一多聚酶链反应第41-43页
  (八) Western blotting检测第43-48页
 三、结果第48-50页
  (一) 移植细胞示踪第48页
  (二) 双下肢温度的变化第48页
  (三) 下肢缺血后肢体变化第48-49页
  (四) 免疫组化检测第49页
  (五) RT-PCR结果第49页
  (六) Western blotting结果第49-50页
 四 讨论第50-55页
  (一) 糖尿病下肢缺血采用干细胞移植进行治疗的优势和存在的问题第50-51页
  (二) 为什么选择脐带血干细胞移植第51-52页
  (三) TGF—β1和CD105与血管病变第52-53页
  (四) 本实验在下肢缺血治疗中的特点第53-54页
  (五) 细胞移植部位的选择第54-55页
 参考文献第55-58页
研究结论第58-70页
综述第70-89页
个人简介第89-90页
在读期间发表文章第90-91页
致谢第91-92页

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