猪戊型肝炎间接ELISA诊断试剂盒的研制
中文摘要 | 第1-9页 |
英文摘要 | 第9-11页 |
1 引言 | 第11-19页 |
·本研究的目的和意义 | 第11-12页 |
·戊型肝炎病毒的研究进展 | 第12-18页 |
·病原 | 第12-13页 |
·基因组结构 | 第13页 |
·流行病学 | 第13-14页 |
·临床症状与病理改变 | 第14-15页 |
·诊断抗原 | 第15-16页 |
·诊断方法 | 第16-18页 |
·研究内容 | 第18-19页 |
·HEV ORF2蛋白部分片段的原核表达 | 第18页 |
·HEV间接ELISA诊断试剂盒的组装 | 第18-19页 |
2 材料和方法 | 第19-27页 |
·实验材料 | 第19-20页 |
·猪粪便和血清 | 第19页 |
·主要生化试剂 | 第19页 |
·主要仪器 | 第19页 |
·引物设计与合成 | 第19-20页 |
·载体与菌株 | 第20页 |
·诊断抗原的制备 | 第20-24页 |
·提取病毒RNA | 第20页 |
·反转录-PCR | 第20-21页 |
·PCR产物的回收和克隆 | 第21页 |
·PCR产物的转化 | 第21-22页 |
·质粒DNA的提取 | 第22页 |
·序列分析 | 第22页 |
·重组表达质粒的筛选与鉴定 | 第22-23页 |
·融合蛋白的诱导表达 | 第23页 |
·表达产物的Western blot分析 | 第23-24页 |
·猪戊型肝炎病毒抗体间接ELISA诊断方法的建立 | 第24-27页 |
·操作程序 | 第24页 |
·间接ELISA方法相关条件的确定试验 | 第24-25页 |
·特异性试验 | 第25页 |
·重复性试验 | 第25页 |
·敏感性实验 | 第25页 |
·现地血清样品检测 | 第25-26页 |
·酶标板的制备及保存试验 | 第26页 |
·试剂稳定性及保存试验 | 第26页 |
·试剂盒的组装 | 第26-27页 |
3 结果 | 第27-39页 |
·基因片段的扩增结果 | 第27页 |
·测序结果 | 第27-28页 |
·重组表达质粒的鉴定 | 第28-29页 |
·融合蛋白的表达 | 第29-30页 |
·Western blot分析 | 第30页 |
·ELISA反应条件的优化 | 第30-34页 |
·最适封闭液的确定 | 第30页 |
·最适的抗原包被浓度和血清稀释度 | 第30-31页 |
·最适的血清工作时间 | 第31-32页 |
·最适的酶标二抗稀释倍数和作用时间 | 第32-33页 |
·底物的作用时间 | 第33-34页 |
·间接ELISA结果的判断 | 第34页 |
·特异性实验 | 第34页 |
·重复性试验 | 第34-35页 |
·批内重复性试验 | 第34-35页 |
·批间重复性试验 | 第35页 |
·敏感性试验 | 第35页 |
·现地血清样品检测 | 第35-37页 |
·青海地区人畜戊型肝炎病毒抗体的检测 | 第35-37页 |
·吉林省猪戊型肝炎病毒抗体的检测 | 第37页 |
·酶标板的保存试验 | 第37-38页 |
·试剂稳定性及保存试验 | 第38页 |
·洗液稳定性及保存试验 | 第38页 |
·标准血清的保存期试验 | 第38页 |
·工作浓度酶标抗体的保存期试验 | 第38页 |
·底物液稳定性和保存试验 | 第38页 |
·试剂盒的初步组装 | 第38-39页 |
4 讨论 | 第39-41页 |
5 结论 | 第41-42页 |
致谢 | 第42-43页 |
参考文献 | 第43-47页 |
附录 | 第47-49页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第49页 |