| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 缩略语表(Abbreviation) | 第11-13页 |
| 1 文献综述 | 第13-28页 |
| ·猪繁殖与呼吸综合征 | 第13-14页 |
| ·PRRS的病原特性 | 第14-15页 |
| ·PRRSV的分类 | 第14页 |
| ·PRRSV的理化特性 | 第14页 |
| ·PRRSV的细胞增殖特性 | 第14-15页 |
| ·PRRSV基因组的结构 | 第15-20页 |
| ·非结构蛋白 | 第16-17页 |
| ·结构蛋白 | 第17-20页 |
| ·PRRS的流行病学 | 第20-21页 |
| ·PRRSV的免疫学反应 | 第21-23页 |
| ·抗 PRRSV感染的天然免疫反应 | 第21-22页 |
| ·抗 PRRSV的体液免疫学反应 | 第22-23页 |
| ·抗 PRRSV的细胞免疫学反应 | 第23页 |
| ·细胞因子 | 第23-25页 |
| ·白细胞介素-8 | 第25-28页 |
| ·IL-8的命名与来源 | 第25-26页 |
| ·IL-8的生理生化特性 | 第26页 |
| ·IL-8的基因结构、表达及调节 | 第26-27页 |
| ·IL-8的生物学活性 | 第27-28页 |
| 2 研究目的与意义 | 第28-29页 |
| 3 材料与方法 | 第29-42页 |
| ·试验材料 | 第29-34页 |
| ·毒株、细胞与菌株 | 第29页 |
| ·载体与质粒 | 第29-32页 |
| ·工具酶和主要试剂 | 第32页 |
| ·培养基与抗生素及其配制 | 第32-33页 |
| ·主要缓冲液与相关试剂及其配制 | 第33-34页 |
| ·试验方法 | 第34-42页 |
| ·限制性内切酶酶切反应 | 第34页 |
| ·PCR产物或酶切产物的电泳检测 | 第34-35页 |
| ·PCR产物或酶切产物的回收与纯化 | 第35页 |
| ·外源 DNA片段与质粒载体的连接反应 | 第35-36页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的制备(氯化钙法) | 第36页 |
| ·连接产物的转化 | 第36-37页 |
| ·质粒的制备与鉴定 | 第37-38页 |
| ·质粒 DNA的定量 | 第38-39页 |
| ·传代细胞的培养 | 第39页 |
| ·PRRSV的增殖 | 第39页 |
| ·半数细胞培养物感染量(TCID_(50))的测量 | 第39页 |
| ·CH-1a的蚀斑纯化 | 第39-40页 |
| ·质粒转染(脂质体介导转染法) | 第40页 |
| ·双荧光素酶检测实验 | 第40-41页 |
| ·统计学分析 | 第41-42页 |
| 4 结果与分析 | 第42-53页 |
| ·PRRSV CH-1a毒株的扩增及 TCID_(50)的测定 | 第42页 |
| ·PRRSV感染 Marc-145细胞激活 IL-8 | 第42-43页 |
| ·参与激活 IL-8的PRRSV编码蛋白 | 第43-49页 |
| ·参与激活 IL-8的PRRSV结构蛋白 | 第43页 |
| ·N蛋白激活 IL-8的必需区域 | 第43-45页 |
| ·参与激活 IL-8的PRRSV非结构蛋白 | 第45页 |
| ·非结构蛋白Nsp2激活 IL-8的功能域 | 第45-49页 |
| ·PRRSV激活 IL-8的相关信号通路研究 | 第49-53页 |
| ·参与 PRRSV激活 IL-8的转录因子 | 第49页 |
| ·NF-κB抑制剂对 PRRSV激活 IL-8的影响 | 第49-50页 |
| ·参与 PRRSV激活 IL-8的MAPK通路 | 第50-53页 |
| 5 讨论与结论 | 第53-56页 |
| ·讨论 | 第53-55页 |
| ·PRRSV感染 Marc-145细胞激活 IL-8 | 第53页 |
| ·N蛋白和 Nsp2蛋白在 Marc-145细胞中表达能激活 IL-8 | 第53页 |
| ·N和Nsp2蛋白激活 IL-8的必需区域的确定 | 第53-54页 |
| ·PRRSV感染 Marc-145细胞激活 IL-8信号通路研究 | 第54-55页 |
| ·结论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
