| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 缩略语/符号说明 | 第9-12页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 研究现状、成果 | 第12-14页 |
| 研究目的、方法 | 第14-15页 |
| 一、不同糖代谢状态下基因芯片筛查lncRNA的血清差异表达及相关分析 | 第15-33页 |
| 1.1 对象和方法 | 第15-18页 |
| 1.1.1 芯片介绍 | 第15页 |
| 1.1.2 研究对象 | 第15-16页 |
| 1.1.3 相关诊断标准 | 第16页 |
| 1.1.4 纳入排除标准 | 第16页 |
| 1.1.5 样本的提取 | 第16页 |
| 1.1.6 样本质检标准与结果 | 第16-17页 |
| 1.1.7 芯片实验操作步骤 | 第17-18页 |
| 1.1.8 芯片实验质控方法 | 第18页 |
| 1.2 结果 | 第18-32页 |
| 1.2.1 箱线图 | 第18-20页 |
| 1.2.2 散点图 | 第20-21页 |
| 1.2.3 差异基因功能分析 | 第21-32页 |
| 1.3 小结 | 第32-33页 |
| 二、糖尿病、糖调节受损患者与正常人全血中差异表达的lncRNA相关验证 | 第33-43页 |
| 2.1 对象和方法 | 第33-37页 |
| 2.1.1 研究对象 | 第33页 |
| 2.1.2 相关诊断标准 | 第33页 |
| 2.1.3 实验分组 | 第33页 |
| 2.1.4 纳入排除标准 | 第33-34页 |
| 2.1.5 仪器设备 | 第34页 |
| 2.1.6 实验试剂 | 第34页 |
| 2.1.7 引物设计 | 第34-35页 |
| 2.1.8 实验试剂配置 | 第35页 |
| 2.1.9 RNA的提取 | 第35页 |
| 2.1.10 RNA沉淀清洗 | 第35-36页 |
| 2.1.11 RNA沉淀溶解 | 第36页 |
| 2.1.12 RNA纯度浓度分析 | 第36页 |
| 2.1.13 cDNA合成 | 第36-37页 |
| 2.1.14 SYBR Green qPCR方法 | 第37页 |
| 2.2 结果 | 第37-42页 |
| 2.2.1 临床资料结果 | 第37-38页 |
| 2.2.2 LncRNA MEG3在三组不同糖代谢人群中存在差异表达 | 第38-40页 |
| 2.2.3 LncRNA MEG3在正常人、糖调节受损患者、糖尿病患者间具有极高诊断价值 | 第40-42页 |
| 2.3 小结 | 第42-43页 |
| 三、细胞中表达差异的lncRNA的验证 | 第43-48页 |
| 3.1 对象和方法 | 第43-46页 |
| 3.1.1 研究对象 | 第43页 |
| 3.1.2 实验仪器设备 | 第43页 |
| 3.1.3 实验试剂 | 第43页 |
| 3.1.4 引物设计 | 第43页 |
| 3.1.5 细胞培养 | 第43-45页 |
| 3.1.6 RNA提取、cDNA合成、PCR方法 | 第45-46页 |
| 3.2 结果 | 第46-48页 |
| 3.2.1 高糖条件下LncRNA MEG3表达下降 | 第46-48页 |
| 四、讨论 | 第48-52页 |
| 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-58页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第58-59页 |
| 综述 | 第59-71页 |
| 综述参考文献 | 第66-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 个人简历 | 第72页 |
