| 摘要 | 第10-12页 |
| ABSTRACT | 第12-15页 |
| 前言 | 第16-19页 |
| 实验一 扶芳藤总黄酮提取工艺优化及提纯纯化 | 第19-31页 |
| 1 材料与仪器 | 第19-20页 |
| 1.1 实验药材来源 | 第19页 |
| 1.2 实验试剂 | 第19页 |
| 1.3 实验仪器 | 第19-20页 |
| 2 实验方法 | 第20-24页 |
| 2.1 测定波长的确定 | 第20-21页 |
| 2.2 标准曲线绘制 | 第21页 |
| 2.3 扶芳藤总黄酮的提取 | 第21-22页 |
| 2.3.1 样品材料预处理 | 第21页 |
| 2.3.2 超声波提取 | 第21-22页 |
| 2.3.3 萃取 | 第22页 |
| 2.4 单因素试验提取条件的确定 | 第22-23页 |
| 2.4.1 提取温度对扶芳藤总黄酮含量的影响 | 第22页 |
| 2.4.2 料液比对扶芳藤总黄酮含量的影响 | 第22页 |
| 2.4.3 提取时间对扶芳藤总黄酮含量的影响 | 第22-23页 |
| 2.5扶芳藤总黄酮提取的正交实验 | 第23页 |
| 2.6 扶芳藤总黄酮的纯化 | 第23-24页 |
| 2.6.1 D101大孔树脂吸附 | 第23页 |
| 2.6.2 总黄酮含量测定 | 第23-24页 |
| 2.7 统计学分析 | 第24页 |
| 3 实验结果 | 第24-29页 |
| 3.1 波长的确定结果 | 第24-25页 |
| 3.2 标准曲线绘制 | 第25-26页 |
| 3.3 单因素实验结果 | 第26-27页 |
| 3.3.1 提取温度对扶芳藤总黄酮含量的影响 | 第26页 |
| 3.3.2 料液比对扶芳藤总黄酮含量的影响 | 第26-27页 |
| 3.3.3 提取时间对扶芳藤总黄酮含量的影响 | 第27页 |
| 3.4 正交实验结果 | 第27-29页 |
| 3.5 扶芳藤总黄酮提取结果 | 第29页 |
| 4 分析与讨论 | 第29-31页 |
| 实验二 扶芳藤总黄酮提取物对D-半乳糖诱导衰老小鼠的影响 | 第31-43页 |
| 1 材料与仪器 | 第31-32页 |
| 1.1 实验动物和药物来源 | 第31页 |
| 1.2 实验试剂 | 第31-32页 |
| 2 实验方法 | 第32-35页 |
| 2.1 动物分组与给药 | 第32页 |
| 2.2 样本的采集 | 第32-33页 |
| 2.3 生化指标的测定 | 第33-35页 |
| 2.3.1 总蛋白浓度测定 | 第33-34页 |
| 2.3.2 过氧化氢酶(CAT)活性 | 第34页 |
| 2.3.3 谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-PX)活性 | 第34页 |
| 2.3.4 总抗氧化能力(T-AOC)活性 | 第34-35页 |
| 2.4 统计学分析 | 第35页 |
| 3 结果 | 第35-41页 |
| 3.1 D-半乳糖诱导衰老小鼠模型的建立 | 第35页 |
| 3.2 BCA标准蛋白曲线 | 第35-36页 |
| 3.3 扶芳藤总黄酮提取物对D-半乳糖诱导衰老小鼠血清中T-AOC、CAT、GSH-PX的影响 | 第36-38页 |
| 3.4 扶芳藤总黄酮提取物对D-半乳糖诱导衰老小鼠心肌组织中T-AOC、CAT、GSH-PX的影响 | 第38-40页 |
| 3.5 扶芳藤总黄酮提取物对D-半乳糖诱导衰老小鼠肝组织中T-AOC、CAT、GSH-PX的影响 | 第40-41页 |
| 4 讨论与分析 | 第41-43页 |
| 实验三 扶芳藤黄酮单体提取分离纯化 | 第43-50页 |
| 1 材料与仪器 | 第43-44页 |
| 1.1 实验试剂 | 第43页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第43-44页 |
| 2 实验方法 | 第44-46页 |
| 2.1 药材预处理 | 第44页 |
| 2.2 大孔树脂分离 | 第44-45页 |
| 2.3 HPLC色谱条件 | 第45页 |
| 2.4 HPLC过程 | 第45页 |
| 2.5 液相-质谱联用条件 | 第45-46页 |
| 2.6 液相-质谱联用鉴定 | 第46页 |
| 3 结果 | 第46-49页 |
| 3.1 HPLC提纯纯化结果 | 第46-47页 |
| 3.2 各个样品的HPLC图谱 | 第47-49页 |
| 4 分析与讨论 | 第49-50页 |
| 实验四 扶芳藤黄酮对血管紧张素Ⅱ诱导衰老HUVEC细胞的影响 | 第50-66页 |
| 1 试剂与仪器 | 第50-53页 |
| 1.1 细胞来源 | 第50页 |
| 1.2 试剂与试剂盒 | 第50-51页 |
| 1.3 仪器与设备 | 第51页 |
| 1.4 溶液配制 | 第51-53页 |
| 2 实验方法 | 第53-60页 |
| 2.1 细胞培养 | 第53页 |
| 2.2 细胞传代 | 第53-54页 |
| 2.3 细胞计数 | 第54-55页 |
| 2.4 细胞冻存 | 第55页 |
| 2.5 细胞复苏 | 第55-56页 |
| 2.6 血管紧张素Ⅱ诱导人脐静脉内皮细胞衰老模型 | 第56页 |
| 2.7 MTT法检测扶芳藤黄酮单体对血管紧张素Ⅱ诱导衰老HUVEC细胞增殖的影响 | 第56-57页 |
| 2.8 β-半乳糖苷酶染色法检测扶芳藤黄酮单体对血管紧张素Ⅱ诱导衰老HUVEC细胞增殖的影响 | 第57-59页 |
| 2.9 统计学分析 | 第59-60页 |
| 3 结果 | 第60-64页 |
| 3.1 血管紧张素Ⅱ诱导人脐静脉内皮细胞诱导衰老模型的建立 | 第60页 |
| 3.2 AngⅡ诱导HUVEC细胞诱导衰老模型建立的条件摸索 | 第60-61页 |
| 3.3 MTT法检测结果 | 第61-63页 |
| 3.4 β-半乳糖苷酶染色法检测结果 | 第63-64页 |
| 4 分析与讨论 | 第64-66页 |
| 全文小结 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-71页 |
| 综述 | 第71-83页 |
| 综述参考文献 | 第79-83页 |
| 英文缩略对照表 | 第83-85页 |
| 致谢 | 第85页 |
