| 摘要 | 第6-10页 |
| ABSTRACT | 第10-14页 |
| 前言与文献综述 | 第15-22页 |
| 第一部分 HIF-1α在早期运动训练干预的小鼠肝肿瘤发病中的相关机制探讨 | 第22-36页 |
| 1 实验材料及研究方法 | 第22-29页 |
| 1.1 实验动物模型的构建 | 第22-23页 |
| 1.2 技术路线 | 第23页 |
| 1.3 主要实验试剂 | 第23-25页 |
| 1.4 主要实验仪器 | 第25-26页 |
| 1.5 实验方法 | 第26-28页 |
| 1.5.1 蛋白印迹法 | 第26-28页 |
| 1.6 统计学处理 | 第28-29页 |
| 2 实验结果与分析 | 第29-36页 |
| 2.1 不同组别小鼠肝脏形态学变化 | 第29-30页 |
| 2.2 预运动小鼠肝肿瘤中相关蛋白的表达变化 | 第30-36页 |
| 2.2.1 预运动小鼠肝肿瘤中HIF-1α蛋白表达的变化 | 第30-31页 |
| 2.2.2 预运动小鼠肝肿瘤中BNIP3蛋白表达的变化 | 第31-32页 |
| 2.2.3 预运动小鼠肝肿瘤中BCL-2蛋白表达的变化 | 第32-33页 |
| 2.2.4 预运动小鼠肝肿瘤中BAX蛋白表达的变化 | 第33-34页 |
| 2.2.5 预运动小鼠肝肿瘤中 BCL-2/BAX 比值的变化 | 第34-35页 |
| 2.2.6 预运动小鼠肝肿瘤中 LC3II/LC3I 比值的变化 | 第35-36页 |
| 第二部分 HIF-1α在不同氧含量环境培养下的小鼠肝肿瘤细胞中相关机制探讨 | 第36-53页 |
| 1 实验材料及研究方法 | 第36-44页 |
| 1.1 实验细胞模型的构建 | 第36-38页 |
| 1.2 技术路线 | 第38页 |
| 1.3 主要实验试剂 | 第38-40页 |
| 1.4 主要实验仪器 | 第40-41页 |
| 1.5 实验方法 | 第41-43页 |
| 1.5.1 MTT比色法 | 第41页 |
| 1.5.2 蛋白印迹法 | 第41页 |
| 1.5.3 免疫荧光 | 第41-43页 |
| 1.7 统计学处理 | 第43-44页 |
| 2 实验结果与分析 | 第44-53页 |
| 2.1 不同氧含量环境培养下肿瘤细胞活力的变化 | 第44-45页 |
| 2.2 不同氧含量环境培养下肿瘤细胞内相关蛋白的表达的变化 | 第45-51页 |
| 2.2.1 不同氧含量环境培养下肿瘤细胞内HIF-1α蛋白表达的变化 | 第45-46页 |
| 2.2.2 不同氧含量环境培养下肿瘤细胞内BNIP3蛋白表达的变化 | 第46-47页 |
| 2.2.3 不同氧含量环境培养下肿瘤细胞内BCL-2蛋白表达的变化 | 第47-48页 |
| 2.2.4 不同氧含量环境培养下肿瘤细胞内BAX蛋白表达的变化 | 第48-49页 |
| 2.2.5 不同氧含量环境培养下肿瘤细胞内 BCL-2 与 BAX 比值的变化 | 第49-50页 |
| 2.2.6 不同氧含量环境培养下肿瘤细胞内 LC3II/LC3I 比值的变化 | 第50-51页 |
| 2.3 不同氧含量环境培养下肿瘤细胞免疫荧光信号变化 | 第51-53页 |
| 2.3.1 不同氧含量环境培养下肿瘤细胞HIF-1α荧光信号变化 | 第51-52页 |
| 2.3.2 不同氧含量环境培养下肿瘤细胞BNIP3荧光信号变化 | 第52-53页 |
| 讨论 | 第53-58页 |
| 1 不同组别小鼠肝脏肿瘤形态学变化 | 第53页 |
| 2 小鼠肝脏肿瘤和小鼠肝癌细胞缺氧蛋白相关指标变化的意义 | 第53-55页 |
| 3 小鼠肝脏肿瘤和小鼠肝癌细胞凋亡相关蛋白指标变化的意义 | 第55-56页 |
| 4 小鼠肝脏肿瘤和小鼠肝癌细胞自噬相关蛋白指标变化的意义 | 第56-57页 |
| 5 不同组别小鼠肝脏肿瘤细胞活性变化的意义 | 第57-58页 |
| 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 研究生个人简历 | 第66页 |
